Размножение пихты: как вырастить дерево из веточки, видео – asnka.ru – КСМ

Содержание

как вырастить дерево из веточки, видео

Один из способов размножения хвойников – заготовка и проращивание черенков, в результате которого сохраняются сортовые признаки дерева. Пихта черенками размножается без проблем, если в процессе выращивания саженцам обеспечить ряд условий.

Можно ли вырастить пихту из ветки

Черенкование – один из способов размножения, который применяется для хвойных пород. Его выбирают, когда необходимо сохранить декоративные свойства дерева. При выращивании из семян дерево может потерять некоторые внешние качества.

Вырастить пихту из черенка – вполне решаемая задача. Важно выбрать здоровое родительское дерево и нарезать побеги в нужные сроки. Даже при соблюдении всех условий укореняется только 30 — 40% черенков.

Преимущества размножения пихты черенкованием:

сохраняются все признаки материнского растения;
не требуются специальные знания или умения;
высокая выносливость саженцев.

Несмотря на преимущества метода, для пихты черенкование используют реже, чем для кипарисовика, туи и других хвойников.

Если нет возможности получить черенки, то выбирают другие способы размножения: семенами или прививкой.

Особенности выращивания пихты из черенков в домашних условиях

Чтобы укоренить пихту из ветки, учитывают следующие особенности этого процесса:

правильно выбирают исходное дерево и его побеги;
соблюдают сроки проведения работ;
готовят субстрат;
обеспечивают в помещении нужный микроклимат;
ухаживают за укоренившимися растениями.

Без обработки не укореняются черенки пихты сибирской, корейской, субальпийской, майра. Лучше всего приживаются одноцветные, изящные, европейские виды . Даже после обработки не дают корни черенки субальпийских и аризонских сортов.

Важно! Корнеобразование во многом зависит от сорта. Даже в рамках одного вида черенкование дает разные результаты.

Сроки черенкования пихты

Чтобы вырастить пихту черенком, важно правильно выбрать сроки работ:

при наступлении весны;
в начале лета;
в конце лета;
осенью.

Наиболее удачный период – это конец зимы или весна, когда у деревьев только начинается сокодвижение. В южных регионах это март, в более холодном климате – апрель. Полученные черенки без проблем укореняют в течение года. Для работ выбирают утренний период или пасмурный день.

Допускается перенести черенкование на июнь, когда происходит интенсивное развитие дерева. Такой посадочный материал в текущем сезоне дает только каллюс. Корневая система культуры развивается на следующий год.

Если пропущены первые два этапа черенкования, то побеги срезают в августе. В этот период приостанавливается их рост и происходит одресневение. В сентябре-ноябре готовят зимние черенки.

Материал, собранный весной и летом, можно высадить сразу. При сборе черенков для размножения пихты осенью их держат до весны в прохладном помещении. При этом обеспечивают температурный режим от +1 до +5 °С и высокую влажность. Удобнее всего хранить материал в пластиковом контейнере и холодильнике.

Как вырастить пихту из веточки

В процесс размножения пихты ветками входит несколько этапов. Сначала выбирают и заготавливают черенки, затем обеспечивают им условия хранения. Для укоренения потребуется субстрат, емкости и определенный микроклимат. Когда черенки укоренятся, их переносят на открытый участок.

Выбор и заготовка черенков

Лучше всего использовать черенки с молодых деревьев в возрасте от 4 до 8 лет. Присматривают ветви с верхней части кроны. Если срезать черенки с нижних или средних участков, то вероятность их укоренения значительно снизится. У таких саженцев ствол имеет искривленную форму, а крона неправильно ветвится.

У родительского дерева выбирают здоровые однолетние побеги. Оптимальная длина черенков — от 10 до 25 см. На ветке должна находиться верхушечная почка. Если повредить ее, то ствол начнет ветвиться, а крона примет неправильную форму.

Для нарезания черенков используют секатор или нож. Срез должен располагаться на 1 см вниз от места одресневения. Этот участок хорошо виден за счет перехода цвета от зеленого к коричневому.

Важно! Допускается применять ветки с двухлетней древесиной у основания – так называемой «пяточкой». Тогда их не срезают, а отрывают от ствола резким движением.

На расстоянии 4 — 6 см полностью удаляют хвою и мелкие ответвления. При благоприятных условиях из этих мест также появляются новые корни.

Как укоренить пихту из ветки

После получения посадочного материала приступают к его укоренению. Ветки не помещают воду. Если побеги собраны в конце лета или осенью, то их опрыскивают водой и оборачивают влажной тканью.

Черенки, готовые к высадке, помещают в раствор стимулятора корнероста. Без такой обработки пихта практически не приживается. Используют специальные препараты Корневин, Укоренит, Рибав. Их растворяют в воде согласно инструкции.

Хорошие результаты дает укоренение черенков пихты в растворе ИМК – индолилмасляной кислоты. Его получают в концентрации 0,01%. При повышенном содержании кислота оказывает токсичное действие. Лучше всего раствор действует при температуре +20 °С. Рабочая жидкость неустойчива к воздействию света и тепла.

Совет! Не рекомендуется держать черенки пихты более 24 часов. Альтернативный вариант – нанесение препарата в сухом виде на нижнюю часть побега.

Дополнительно нижний край черенков опускают в раствор марганцовки или препарата Фундазол. Это позволит продезинфицировать материал и избежать грибковых заболеваний.

Для черенкования пихты зимой готовят субстрат, состоящий из дерновой земли, перегноя и песка. Все компоненты берут в равных пропорциях. Если используется почва с участка, то сначала ее прогревают в духовой печи для дезинфицирования.

Для укоренения черенков используют пластиковые емкости, в которых обязательно делают дренажные отверстия для отвода влаги. Оптимальная высота контейнеров – от 10 до 15 см.

Порядок черенкования пихты в домашних условиях зимой:

В контейнеры слоями насыпают землю, смешанную с перегноем, сверху – песок.
Черенки углубляют на 2 — 6 см под углом 45°. Между ними оставляют 10 см.
Посадки прикрывают пленкой.
Субстрат обильно поливают.

Материал укореняют при температуре 20 — 25 °C и влажности от 90%. Дополнительно требуется рассеянный свет. Если день слишком короткий, включают фитолампы.

Процесс образования корней занимает до 9 месяцев. Сначала в нижней части побега формируется каллюс в виде новообразований на трещинах и надреза. Затем вырастают корни. Появление каллюса не гарантирует, что саженец приживется.

Видео о размножении пихты черенками в домашних условиях:

Как посадить пихту черенком в открытый грунт

На следующий год укоренившиеся растения переносят в открытый грунт. Для пихты выбирают солнечное место или полутень. Саженцы плохо переносят загрязненность городов. Все сорта требуют влажной дренированной почвы.

Черенки пересаживают в пасмурный или дождливый день. Место готовят за 2 — 3 недели. После усадки грунта приступают к переносу саженца на новое место.

Порядок высадки пихты:

На выбранном участке делают лунки диаметром 40 см и глубиной 50 см.

На дно помещают слой щебня или керамзита толщиной 10 — 15 см.
Черенки осторожно вынимают из емкости, стараясь не разрушать земляной ком.
Растение переносят в углубление, корни засыпают землей.
Почву обильно поливают.
Насаждения прикрывают бумажными колпаками или рамой.

Уход после посадки пихты черенками

Чтобы вырастить дерево из ветки пихты, важно правильно ухаживать за молодыми растениями. Первые годы после посадки их развитие замедлено.

Посадки регулярно поливают, но не допускают застоя влаги в грунте. Периодически рыхлят почву на глубину 25 см и пропалывают сорняки. Для подкормки выбирают удобрение Кемира или другие минеральные комплексы.

Для мульчирования грунта используют торф или опилки, которые насыпают в приствольный круг. На зиму молодое дерево укрывают лапником или нетканым полотном.

Заключение

Пихта черенками без проблем размножается, если соблюдать основные правила. Работы начинают с заготовки побегов, которые проращивают в домашних условиях. Саженцы переносят на постоянное место, где обеспечивают им регулярный уход.

Размножение пихты – советы от Greensad

Такое красивое дерево, как пихта многие хотят посадить на своём участке и отправляются за саженцами в садовый центр. Между тем пихту можно вполне успешно размножать и самому. Обычно саженцы пихты садоводы – любители получают двумя способами: из семян или укореняя черенки. Из семян чаще выращивают видовые пихты, а декоративные формы, созданные селекционерами, обычно размножают с помощью черенков, чтобы они не утратили свои декоративные качества.

Заготовка семян

Заготовку семян проводят, когда только начинается созревание шишек – они должны быть немного недозревшими. Собранные шишки подсушивают в доме и извлекают семена. Высаживать семена можно сразу осенью, но лучше подержать их в прохладном, сухом месте до будущей весны. Предварительно семена нужно опустить на полчаса в 0,5% раствор марганцовки, затем промыть чистой водой и замочить для набухания на сутки. После этого их помещают в капроновые мешочки, наполненные влажным песком и до посева (обычно на месяц) помещают под слой уплотнённого снега или просто на нижнюю полку холодильника. В принципе, если вы располагаете достаточным количеством семян, то можно их сеять и без подготовки – всходов, появившихся без предварительной обработки семян, будет вполне достаточно.

Посев семян

Высевают семена в конце марта. Почва должна быть супесчаной и рыхлой, на нее насыпают слой опилок (толщиной 2 см). Семена выкладывают на первый слой опилок, а сверху присыпают еще одним слоем толщиной 1-1,5 см (для него используют свежие хвойные опилки) и обильно поливают. Парник накрывают пленкой, и защищают от прямых солнечных лучей. Примерно 1-2 раза в сутки парник приоткрывают для проветривания и полива. Хотя вместо полива лучше проводить опрыскивания водой из пульверизатора. Почву при выращивании сеянцев держат в умеренно-влажном состоянии. Излишнее переувлажнение может вызывать загнивание семян. После появления всходов укрывной материал нужно снять. Подкармливают всходы трижды за лето, используя комплексные минеральные удобрения для хвойных. Подкормки совмещают с поливами.

Размножение пихты черенками

Если вы хотите размножать пихту черенками, то помните, что черенки нарезают только с однолетних побегов с верхушечной почкой. Нарезают их:
• в конце апреля, такие весенние черенки укореняются в год посадки.
• в июне, когда происходит интенсивный рост побегов. Июньские черенки в первый год образуют каллюс, а укореняются на второй год;
• в августе, когда рост побегов прекращается и начинается одревеснение побегов
• в сентябре — ноябре (одревесневшие, или зимние черенки).
Весенние и летние черенки высаживают сразу, а одревесневшие до весенней посадки хранят в прохладном месте с температурой 1-5°С и высокой влажностью, например в пластиковом контейнере в холодильнике.
Лучше всего приживаются черенки с молодых 4-8-летних растений. Срезают только однолетние побеги. Причем полностью, иногда даже с 2-летней древесиной в основании. Обычно длина черенков пихты составляет 10-25 см. Хвою снимают только в нижней части веточки на глубину посадки (2-6 см). Для черенкования используют побеги с верхней половины кроны, так как срезанные в середине или внизу впоследствии могут дать однобокую или неправильно ветвящуюся крону с кривым стволом, к тому же они плохо укореняются. Высаживают черенки так же, как и семена в парник. На дно укладывают дренаж из мелких камней или щебня слоем 4-5 см, затем насыпают дерновую землю слоем 10-12 см, а на нее промытый речной песок слоем 5-6 см. Сверху прикрывают пленкой, так, чтобы расстояние до песка было 30 см. В парнике температура должна быть около 20 С,. Перед посадкой черенки на половину длины погружают на сутки в любой разведенный стимулятор роста корней (например, корневин). Высаживают в песок наклонно под углом 45 градусов на глубину 2-6 см, размещая с интервалом 10 см, и сразу же обильно поливают. В дальнейшем весной поливают, опрыскивая из лейки с мелкими отверстиями, один раз в день, летом — до четырех раз. В августе, когда появляются корни, полив сокращают до ежедневного.

Уход за саженцами пихты

После начала укоренения хорошие результаты дает опрыскивание черенков специальной питательной смесью. Для ее приготовления в 1 л воды разводят 8 г аммиачной селитры, 20 г простого суперфосфата, 1-2 г сернокислого магния, 16 г калийной селитры, 30 г сахарозы, 60 мг индолилуксусной кислоты.
Когда саженцы подрастут – те, что из семян на 2-3 год, а те, что получены из черенков – на следующий год, их можно высаживать в открытый грунт на постоянное место. Все пихты любят влажные, богатые, глубокие суглинки. Посадку желательно делать в теплые, пасмурные дни, еще лучше — под дождь. Посадочное место готовят как минимум за 2 недели до высадки растения. Выкапывают ямы глубиной 60-80 см и шириной, зависящей от размера корневой системы. Если у вас тяжелые глинистые почвы, при посадке пихты на дне ямы необходимо сделать дренаж из щебенки или битого кирпича, уложенных слоем 20 см. Дно ямы рыхлят на глубину 10-15 см и наполовину заполняют питательной смесью, состоящей из глинистой почвы, листовой земли или перегноя, торфа и речного песка (2:3:1:1). Высаживают растение, расположив корни горизонтально, и засыпают яму опять садовой землей. Помещают саженец так, чтобы корневая шейка была на уровне земли. Расстояние между пихтами: в аллее 4-5 м, в группах 3-3,5 м, в живых изгородях в шахматном порядке до 2,5 м.

Молодые пихты нуждаются в регулярном рыхлении почвы на глубину 10-12 см с одновременной прополкой от сорняков и последующим мульчированием приствольного круга опилками, щепой, торфом слоем 5-8 см. Поливают только в засушливую погоду, выливая 15-20 л воды под каждое растение. Особенно увлекаться поливом не следует, так как переувлажнение пихтам противопоказано. Пихта в формировании кроны не нуждается, обрезают только сухие, поврежденные или больные ветви. В нашем климате пихты зимуют хорошо, и в укрытии нуждаются только молодые растения. Для их защиты от поздневесенних заморозков осенью почву в приствольном круге засыпают сухими листьями или торфом (слой 10-12 см), а крону укрывают лапником.

Как вырастить пихту из веточки

Автор Евгения На чтение 18 мин. Опубликовано 24.01.2020

Хвойные растения: Посади веточку – получишь елочку

Разобраться с побегами

Черенки лучше брать от растений возрастом 4 – 8 лет. У более молодых тоже можно, но крона у них обычно маленькая, резать там особо нечего. Побеги от старых кустов укореняются гораздо хуже.

Лучше всего для черенкования подходят ветки 2 – 3-го порядка длиной 7 – 10 см. Их надо не срезать, а отрывать от материнского растения вместе с кусочком коры основного побега (так называемая пятка). Если пятка получилась слишком длинной, ее надо подрезать секатором – в противном случае она загниет.

У хвойных пирамидальной формы черенки лучше нарезать из центральной части кроны, из глубины – растения, выращенные из наружных побегов, часто бывают неправильной формы. У пестрых сортов побеги надо брать с южной части куста – там они ярче окрашены.

Если нарезанные черенки предстоит везти более 30 минут, их надо завернуть во влажную ткань. И высаживать как можно скорее – они высыхают очень быстро.

Готовим их к посадке

Первым делом в нижней части черенков нужно обрезать острым секатором все хвоинки – примерно на треть побега. После этого черенки замачивают на 12 часов в растворе «Эпина» (1 – 2 капли на 100 мл воды).

Перед посадкой черенки опудривают стимулятором корнеобразования («Корневин» или «УкоренитЪ»).

Ставим на укоренение

Укоренять черенки хвойных растений удобнее всего методом «рассада по-московски». Он часто вызывает споры, поскольку не очень подходит для овощей, но в этом случае он идеален!

Расстелите на столе черный полиэтиленовый пакет. На верхнюю половину по всей длине пакета уложите влажный мох сфагнум. На него черенки – таким образом, чтобы на мох попала только очищенная от хвоинок часть стебля. Зеленая верхушка должна быть за пределами пакета. Сверху на основание черенков уложите еще один слой сфагнума. Подверните нижнюю часть пакета, сверните его в рулон и закрепите канцелярской резинкой.

Получившийся рулон поставьте вертикально в прозрачный полиэтиленовый пакет и завяжите его. Это своего рода тепличка, в котором будет поддерживаться постоянно высокая влажность воздуха. Пакет повесьте в светлое прохладное место, например, на ручку оконной рамы.

Ухаживать за черенками проще простого: раз в неделю нужно развязывать пакет и оставлять его на пару часов, чтобы растения проветрились. А затем опрыснуть их из пульверизатора и снова завязать пакет.

К весне черенки образуют хорошие корни и их можно будет высадить в сад.

Высаживаем в сад

Укорененные черенки высаживают в сад в начале мая. Но не на постоянное место – сначала они должны подрасти в школке.

Выкопайте в тенистом уголке сада бороздки глубиной 10 см, насыпьте на дно примерно 5 см песка. Посадите черенки вместе со мхом, засыпьте землей и слегка ее уплотните. Полейте саженцы и укройте их нетканкой – она предохранит молодые растения от солнца, ветра и испарения влаги.

В школке саженцы должны провести 2 года. А затем их можно пересадить на постоянное место.

Размножение пихты черенками в домашних условиях

Можно ли вырастить пихту из ветки

Преимущества размножения пихты черенкованием:

сохраняются все признаки материнского растения;
не требуются специальные знания или умения;
высокая выносливость саженцев.

Несмотря на преимущества метода, для пихты черенкование используют реже, чем для кипарисовика, туи и других хвойников. Если нет возможности получить черенки, то выбирают другие способы размножения: семенами или прививкой.

Особенности выращивания пихты из черенков в домашних условиях

Чтобы укоренить пихту из ветки, учитывают следующие особенности этого процесса:

правильно выбирают исходное дерево и его побеги;
соблюдают сроки проведения работ;
готовят субстрат;
обеспечивают в помещении нужный микроклимат;
ухаживают за укоренившимися растениями.

Сроки черенкования пихты

Чтобы вырастить пихту черенком, важно правильно выбрать сроки работ:

при наступлении весны;
в начале лета;
в конце лета;
осенью.

Как вырастить пихту из веточки

Выбор и заготовка черенков

У родительского дерева выбирают здоровые однолетние побеги. Оптимальная длина черенков – от 10 до 25 см. На ветке должна находиться верхушечная почка. Если повредить ее, то ствол начнет ветвиться, а крона примет неправильную форму.

На расстоянии 4 – 6 см полностью удаляют хвою и мелкие ответвления. При благоприятных условиях из этих мест также появляются новые корни.

Как укоренить пихту из ветки

Порядок черенкования пихты в домашних условиях зимой:

В контейнеры слоями насыпают землю, смешанную с перегноем, сверху – песок.
Черенки углубляют на 2 – 6 см под углом 45°. Между ними оставляют 10 см.
Посадки прикрывают пленкой.
Субстрат обильно поливают.

Материал укореняют при температуре 20 – 25 °C и влажности от 90%. Дополнительно требуется рассеянный свет. Если день слишком короткий, включают фитолампы.

Видео о размножении пихты черенками в домашних условиях:

Как посадить пихту черенком в открытый грунт

Черенки пересаживают в пасмурный или дождливый день. Место готовят за 2 – 3 недели. После усадки грунта приступают к переносу саженца на новое место.

Порядок высадки пихты:

На выбранном участке делают лунки диаметром 40 см и глубиной 50 см.
На дно помещают слой щебня или керамзита толщиной 10 – 15 см.
Черенки осторожно вынимают из емкости, стараясь не разрушать земляной ком.
Растение переносят в углубление, корни засыпают землей.
Почву обильно поливают.
Насаждения прикрывают бумажными колпаками или рамой.

Уход после посадки пихты черенками

Заключение

Неприхотливая красавица пихта. Посадка и размножение пихты

Симпатичное хвойное деревце пихта с вертикально растущими на лапках шишками, похожими на новогодние игрушки, — настоящее украшение участка, тем более в канун зимних праздников.

Созревают шишки в год цветения пихты. А наступает оно один раз в 1-3 года (зависит от возраста растения и вида). Осенью или зимой плоды раскрываются, освобождая семена-орешки. Можно собрать их и попробовать вырастить новые пихты.

Пихта из семян

Семена пихты нужно стратифицировать минимум 30-40 дней. Можно поместить их во влажный песок или сложить в полиэтиленовый пакетик и — на холод. Высевать предпочтительно весной. Сухие семена накануне нужно замочить. Субстрат — компост, песок, перепревшие опилки (3:1:0,5). Посевы для сохранения влажности можно замульчировать пихтовым опадом. При поддержании достаточной влажности ростки начинают появляться на 7-10 день. В первые 10 лет жизни пихты растут очень медленно. Пересаживать их в открытый грунт лучше на 4-5 год жизни.

Вегетативное размножение пихты

Сортовые пихты для сохранения всех материнских признаков размножают вегетативно. Самый простой способ — отводками. Нижние ветви пихты могут давать корни при соприкосновении с почвой даже без непосредственного участия садовода. Окоренение происходит в течение 1 -2 лет. Однако при таком способе размножения конусовидная форма кроны не гарантирована.

При размножении пихты черенками корешки появляются на 8-9 месяц. Использовать нужно только веточки последнего года жизни и брать их желательно со старых растений ранней весной в самом начале пробуждения почек. Низ черенков очищают от хвоинок, погружают на несколько часов в слабый раствор марганцовки. Высаживают под наклоном 30 градусов, заглубляя на 2-3 см. Самый простой вариант почвосмеси — компост и песок (2:1). Очень важно поддерживать достаточную влажность воздуха.

Посадка

Лучшее время для посадки — апрель или август-сентябрь. Контейнерные растения можно переваливать в открытый грунт в течение всего сезона вегетации. Идеальный посадочный материал — 5-10-летние саженцы. Место для пихты не стоит выбирать на солнцепеке, она достаточно теневынослива.

Посадочную яму (примерно 50×50 см) и почвосмесь, которой ее затем будем наполнять, желательно подготовить за несколько дней. Почвосмесь — глина, листовая земля или перегной, торф, песок (2:3:1:1). Еще один вариант — суглинок и перегной (2:1). На тяжелых почвах на дно нужно положить дренаж слоем 15-20 см. Глубина посадки — 60-80 см. Корневую шейку нужно оставлять на уровне земли.

Пихты достаточно неприхотливы, но предпочитают богатую, влажную и дренированную почву. Не любят чрезмерной сухости и воздуха, и почвы. Поливать хотя бы первые 5-10 лет нужно достаточно регулярно, потом растение сформирует мощный глубокий корень и само сможет добывать достаточное количество влаги. Первые 2-3 года нужно подкармливать специальным удобрением для хвойных, дальше — по желанию. Дело в том, что пихта накапливает под кроной слой хвойного опада, который служит ей и подкормкой, и мульчей. Убирать его не надо! Пихта достаточно зимостойка, но молодые растения все же желательно прикрывать лапником, чтобы их не повредили возвратные весенние заморозки.

Кстати, следует иметь в виду, что ветви самой пихты для укрытия садовых растений использовать не стоит. Весной на них остается достаточно много хвои, которая не пропускает как следует ни свет, ни свежий воздух, что ранней весной для укрываемых растений может оказаться губительным.

Дмитрий Кизулев, д. Станички Смоленской обл.

Размножение хвойных черенками зимой – самый легкий способ получения саженцев

Добавление статьи в новую подборку

Туя, можжевельник, кипарисовик и другие хвойные культуры стали уже неизменной деталью дачных участков. Но цена на саженцы “кусается” – пару растений еще можно купить, а вот как быть, если вам нужен не один десяток?

К счастью, хвойные достаточно хорошо черенкуются, а лучше время для этого, как ни странно, зима. Если у вас или ваших знакомых уже есть на участке колючие кусты или деревья, которые вы хотели бы размножить, ближайшая зима дает вам шанс.

Когда черенковать хвойные

В феврале, когда нам кажется, что зима не кончится никогда, хвойные культуры чувствуют приближение тепла и начинают потихоньку пускаться в рост. Внешне они скованы холодом, но под снежным покровом начинается неспешное сокодвижение. В это время стоит приступать к черенкованию – растения “настроены” на развитие и отлично укореняются. К тому же, зимой меньше шансов столкнуться с болезнями или вредителями хвойных, которые также ушли на зимовку.

В конце зимы солнце печет еще не так сильно, и ожогов на зелени нет, однако черенковать стоит быстро, а после – вернуть укрытия на место или как раз установить их.

Как черенковать хвойные

Для черенкования лучше всего подходят кустики в возрасте от 4 до 8 лет. У более молодых экземпляров от несвоевременной обрезки может существенно пострадать форма кроны, а у взрослых снижена способность к корнеобразованию.

Срезать стоит боковые ветви 2-3 порядка длиной 7-10 см. Заготавливают их вместе с кусочком прошлогодней коры, который именуется “пяткой”. Если на основании черенка остались длинные лоскуты коры, их нужно аккуратно обрезать, чтобы не провоцировать появление гнили.

У хвойных с пестроокрашенной кроной черенки заготавливают с той стороны, которая лучше освещалась солнцем, а у хвойных пирамидальной формы – из центральной части кроны, а не сбоку.

Приступать к укоренению черенков нужно сразу после заготовки, храня их максимум несколько часов во влажном сфагнуме.

Как укоренять хвойные

Укоренять хвойные трудно лишь на первый взгляд. Рассмотрим пошаговую инструкцию укоренения черенков хвойных культур.

Обрежьте острым секатором нижние веточки и хвою на черенках так, чтобы 3-4 см от основания остались голыми.
Поставьте их на 12 часов в банку с раствором стимулятора корнеобразования (Корневин, Эпин и др.), приготовленным по инструкции.
Опудрите “пяточки” черенков в сухом стимуляторе роста.
Расстелите на столе кусок тонкой пленки или мусорный пакет объемом 30 л с отрезанным дном.
На одну половину мешка уложите слой влажного сфагнума.
На слое мха разложите черенки так, чтобы очищенная от лишней хвои часть находилась на сфагнуме, а пушистая за ее пределами “висела” в воздухе.
Сверху на основание черенков уложите второй слой сфагнума и накройте второй частью пакета.
Получившуюся ленту скатайте в рулон, перевяжите тесьмой и поставьте в пакет из-под сока или молока (подойдет любая не протекающая устойчивая емкость).
Сверху наденьте на получившуюся конструкцию большой прозрачный пакет и отправьте ее на светлый подоконник.
Следите, чтобы черенки были освещены максимально долгое время (не меньше 10 часов в сутки), но при этом не находились под воздействием прямых солнечных лучей.

Как ухаживать за укорененными черенками хвойных

По сути, черенкам не требуется почти никакого ухода. Для того чтобы они не пересыхали, достаточно раз в 7-10 дней опрыскивать их водой из пульверизатора. А чтобы укоренение шло активнее, и в закрытом пространстве парника не заводилась плесень, желательно каждую неделю проветривать его. Два раза в месяц опрыскивайте черенки раствором Эпина по инструкции, а к апрелю будьте готовы выставить их на балкон.

Желательно, чтобы балкон или лоджия были застеклены или иным способом защищены от ветра и температурных перепадов. Помните, что лучше всего укоренение идет при температуре 18-20°С, и если погода не позволяет, с переселением хвойных лучше не спешить.

Когда и куда пересаживать укорененные черенки хвойных

Пересадку хвойных из горшочка на улицу можно проводить, начиная с середины мая. Для этого стоит использовать свою школку или, если таковой нет, приготовить специальную гряду в тенистом уголке сада.

Выкопайте неглубокие (до 10 см) бороздки, насыпьте на дно несколько сантиметров песка, а затем приступайте к пересадке. Укоренившиеся черенки переносите в борозды вместе со мхом, чтобы не повредить тонкие корешки, и присыпайте грунтом. Сразу после высадки полейте рядки и установите над ними дуги, на которые натяните тонкий спанбонд. Такое укрытие защитит молодые хвойные от прямых солнечных лучей, ветра, и позволит им легче перенести пересадку и быстрее адаптироваться на новом месте.

Ну а когда хвойные подрастут, нужно будет посадить их на постоянное место и ухаживать, как и за обычными саженцами.

Укореняемость черенков хвойных зимой не менее 90%, а значит, вы легко получите необходимое вам количество саженцев и сможете украсить ими свой участок или подарить друзьям.

Материал подготовлен на основе информации из журнала “Цветок”.

Размножение пихты черенкованием в домашних условиях

Хвойные растения на приусадебном участке — это всегда красиво и удобно. Они неприхотливы, зелёные круглый год, к тому же легко размножаются. Одним их эффективных методов разведения пихты является черенкование. О том, как это делать, подробно рассказывается ниже.

Плюсы и минусы черенкования пихты

Среди методов размножения хвойных деревьев есть несколько вегетативных и семенной. Среди первых:

В домашних условиях садоводы предпочитают размножать пихту с помощью черенков.

И здесь есть несколько преимуществ перед другими способами:
получение растения с материнскими характеристиками;
процедура не трудоёмкая, время уходит большей частью на укоренение;
высокий процент приживаемости саженцев;
отсутствие зависимости от сезона.

Заготавливать черенки можно в любое время года, главное — правильно выбрать срок посадки. Весенние, летние и осенние саженцы укореняют в текущем году. Побеги, заготовленные в конце осени или зимой, хранят в прохладном помещении до весны.

Единственным недостатком специалисты считают окончательное укоренение только на второй год после посадки. Прежде чем появятся жизнеспособные корешки, черенок будет наращивать каллюс — ткань, способную создавать новые части растения, т. е. корневые побеги.

Как правильно заготовить черенок

Процедуру проводят пасмурным днём, в утреннее время. В качестве донора выбирают дерево не старше 8 лет. Черенки заготавливают с однолетних ветвей, имеющих минимум одну верхушечную почку. Рекомендуется обратить внимание на северную сторону кроны растения.

Длина заготовки — до 10 см; обязательно надо срезать ветку с кусочком коры. Сделав надрез, далее лучше резко оторвать её. Перед началом укоренения нужно подчистить торчащие кусочки древесины и убедиться, что на самой пятке веточки нет отслоений коры от древесного слоя.

Процесс укоренения

Черенок для профилактики грибковых заболеваний обрабатывают фунгицидом, например, «Фундазолом» (10 г на 0,5 л воды) или слабо концентрированным раствором марганцовки. Замочить его в обеззараживающей смеси нужно на 4–6 часов.

Для приготовления субстрата берут равные части следующих компонентов:

Контейнер или ящик помещают в освещённое и тёплое место без сквозняков. Освещение должно быть рассеянным, чтобы прямые солнечные лучи не попадали на растение. Побег заглубляют во влажный грунт под углом 45°, на 5–7 см.

Укоренять пихту рекомендуется с нижним подогревом, чтобы почва в ёмкости прогревалась до +20…+22°С. Температуру воздуха поддерживают в диапазоне +16…+19°С.

Первое время черенок находится под плёнкой. Ежедневно саженец проветривают и удаляют конденсат. На зиму ёмкость с пихтой убирают в погреб или на отапливаемую веранду. Весной его снова надо вынести на свежий воздух.

Дважды за зиму саженец подкармливают, внося 10 г препарата «Зелёная игла», после чего тщательно поливают.

Пересадка в открытый грунт

Посадить молодые растения следует на участке с лёгкой тенью, с залеганием грунтовых вод не выше 2,5 м от поверхности. Укоренённый саженец можно переносить на постоянное место роста в апреле или сентябре. При посадке нескольких экземпляров между ними нужно оставить расстояние в 5 м.

Видео: Как правильно сажать и ухаживать за пихтой

Технология пересадки:

Лунка размером 70×55 см подготавливается за 2 недели до процедуры.
На дно обязательно нужен слой дренажного материала толщиной 20 см.
Перед посадкой извлечённый из ямы грунт смешивают с 250 г древесной золы и 50 г суперфосфата.
Поместив растение на насыпь на дне лунки, глубина которой соответствует длине корней, его со всех сторон присыпают почвой.
При этом точка роста деревца остаётся над поверхностью.
После проводят полив, грунт должен промокнуть на 20 см вглубь.

Уход за растением

Выращивать культуру несложно, она не требует особых процедур по уходу. Неприхотливое вечнозелёное растение не нуждается в частом поливе, достаточно осадков. Если лето жаркое и дождей мало, проводят орошение почвы в приствольном кругу раз в месяц, расходуя на молодое деревце 10–15 л, на взрослый экземпляр 30–50 л воды.

Как размножить пихту

Пихта корейская: выращивание, размножение, сорта для сада.

Посадка пихты корейской

За высаженными черенками до укоренения необходим постоянный уход. Посадки регулярно поливают, не допуская однако перелива и застоя влаги. Почва должна быть умеренно влажной и воздухоемкой. Теплицу или парник нужно проветривать, а в теплую погоду посадки опрыскивают водой, не допуская перегрева выше 30°С. Периодически грядку поливают растворами фунгицида и эпина.

Нарезанные черенки хвойных нужно высадить в грунт как можно быстрее. В воду их обычно не ставят, чтобы не произошла закупорка сосудов выделяющейся смолой. Если нужно хранить черенки некоторое время, лучше их сбрызнуть водой, обернуть влажной тканью и поместить в пакете в прохладное место.

Полезно знать, что разные виды и даже сорта одного вида могут черенковаться с большим или меньшим успехом. Легче всего черенкуются представители семейств Кипарисовых (Cupressaceae) – туя, микробиота, кипарисовик, можжевельник, туевик и Тисовых (Тахасеае). Очень трудно черенкуются представители сосновых (Pináceae): ели, тсуги, псевдотсуги. Практически невозможно размножить черенками сосны, пихты и лиственницы, для них как раз применяют семенное размножение и прививку.

Пихта корейская: посадка и уход

Как сажать пихту корейскую: размножение дерева

Как и все растения данного семейства, пихта корейская, посадка и уход за которой доступны каждому садоводу, требует единовременной подкормки. Лучше всего это сделать на второй или третий год после посадки. Подкормка пихты корейской проводится комплексными минеральными удобрениями. Уход за пихтой корейской предполагает содержание почвы под ней в рыхлом состоянии, желательно, без сорняков. Для стимуляции роста деревьев семейства сосновых весьма эффективно мульчирование почвы при помощи торфа или опилок слоем 5-8 см.

Уход за пихтой корейской

В отличие от других пихт, слишком чувствительных к загрязнению воздуха, пихта корейская более устойчива к городским условиям. Поэтому она часто применяется для посадки в группах и солитерах.

Селект (Select)

– подушковидная форма кроны, не более 0,3 метра высотой.

Болезни пихты корейской

Сорта пихты корейской

Пихта корейская очень теневынослива и уступает в этом среди всех хвойников только тису. Даже в неглубокой тени она способна образовывать достаточно густую крону, спускающуюся до самой земли. Но полутень для нее требуется лишь в первые годы, и на открытом месте крона формируется гораздо более пышной и красивой.

Через некоторое время после посадки в нижней части черенка начинает появляться каллюс (от лат. callus — мозоль) – тканевое новообразование на раневых поверхностях (трещинах, надрезах, в основании черенков и пр.), способствующее заживлению ран, состоящиее из паренхимных клеток, имеющее форму наплыва (иногда в виде тонкого слоя или «творожка»). Затем появляются корни. Однако, даже с мощным каллюсом черенки могут не развить корней и в конце концов погибнуть. Укоренение начинается через 3-4 месяца, но сроки у разных пород разные. После укоренения черенков и образования приростов, парники начинают понемногу приоткрывать для закалки молодых растений. Летом образование корней может затормозиться, а в сентябре снова продолжиться.

Заготовленные черенки можно опустить на несколько часов в раствор стимулятора корнеобразования, еще лучше порошком стимулятора припудрить срез перед посадкой в грунт. В качестве стимуляторов корнеобразования используют различные препараты, содержащие соли бета-индолилуксусной кислоты (ИУК), гетероауксин, Корневин (соли бета-индолил-масляной кислоты), соли янтарной кислоты (ЯК), Укоренит , Рибав + микрасса и т.д. Есть сведения, что длительное выдерживание хвойных в водных растворах провоцирует отслоение коры, поэтому рекомендуют применение порошков для припудривания.

Для хорошего результата также необходимо учесть ряд факторов, поскольку нарушение только одного из них может свести на нет всю предшествующую работу.

udec.ru

Как правило, крона пихты корейской формируется самостоятельно, поэтому стрижка её не проводится. Уход за пихтой корейской предполагает удаление в осенний период центральных почек, расположенных на боковых побегах.

Посадка пихты корейской, как и большинства растений семейства сосновых, производится ранней весной, ещё до того, как распустятся почки. В течение нескольких дней после пересадки дерево следует ежедневно опрыскивать, чтобы улучшить приживаемость. В молодом возрасте пихта корейская, размножение которой производится отводками или черенками, переносит посадку достаточно легко, взрослые же растения приживаются плохо.

– низкорослый сорт, не более 4 метров высотой, с фиолетово-синими шишечками, размером 3 – 4 см; отличается ранним вступлением в плодоношение.

Пихта из семян

Вегетативное размножение пихты

, чаще всего выращиваемые в садах:

Это дерево нельзя назвать неженкой, но для него очень важна посадка раз и навсегда – никаких пересадок, стрижек и обрезок. Очень не любит, когда прикасаются к ее стволу: под корой имеются особые смоляные карманы, похожие на пузырьки на коре. Если на них нажать, смола вытечет наружу, что очень вредно для растения.

Посадка

У можжевельников корни образуются раньше побегов, у сосны- одновременно и побеги, и корни, а у ели и лиственницы сначала побеги, а затем только корни. Каллюс у елей и сосен появляется в первый год, а корни только на второй.

Также есть один интересный прием: на конце черенка делают острым концом ножа продольные надрезы или раскол основания на глубину до1 см, чтобы обнажилась большая поверхность камбия , клетки которого легче образуют корни.

Уход

Для начала нужно правильно выбрать маточник – взрослое растение, с которого вы собираетесь нарезать черенки. Лучше всего укореняются побеги, взятые от молодых, активнорастущих экземпляров 4-8 лет. У растений старше 10 лет способность к укоренению снижается.

Содержание

designdachi.ru

Как и любое другое растение, пихта корейская подвержена болезням. В частности, из-за резкого перепада температур может опадать хвоя и почки, дерево теряет свои декоративные свойства, а в некоторых случаях перепад температур может привести к гибели всего растения.

Самый удобный возраст для посадки пихты корейской – 5-10 лет. При этом желательно добавить медленно растворимые минеральные удобрения. Посадка пихты корейской производится на глубину не более 80 см. Пересаживая дерево, нужно внимательно следить за расположением корневой шейки – она ни в коем случае не должна быть глубоко заземлена, лучше всего оставить её на уровне земли. После посадки дерево следует обильно полить.

Компакт Дварф (Compact Dwarf)

Какие виды хвойных поддаются размножению черенками?

Как выбрать маточник?

Пихта корейская, как и все ее сородичи, предпочитает высокую влажность почвы и воздуха, но не переносит застой воды. Корневая система у нее не глубокая, что объясняет особую чувствительность к уплотнению почвы. Поэтому приствольный круг лучше замульчировать и ни в коем случае не затаптывать и не закладывать плиткой. Мульчирование также избавит от частых поливов во время засухи.

Понятно, что условия укоренения отличаются от требований взрослых растений. Поэтому укореняют черенки и доращивают молодые растения в специальном защищенном месте, затем по желанию их можно пересадить в контейнеры и только на следующий год высадить на постоянное место согласно требованиям и габитусу вида и сорта. Также молодые растения можно оставить на доращивание еще на 2-3 года, поскольку именно после пересадок зачастую происходит наибольшее количество выпадов.

Укоренение черенков может происходить от нескольких месяцев до года, поэтому важно выбрать и тщательно подготовить место для высадки заготовленных черенков. Лучших результатов можно достичь, высадив черенки в ящики с рыхлой, воздухоемкой почвой, например в смесь песка, хвойной почвы и верхового раскисленного торфа в пропорции 1:1:1, которые помещают в теплицуили парник. Лучшими условиями считаются температура воздуха и субстрата 21-24°С и относительная влажность воздуха 95-100 %. Температура почвы для средне- и трудноукореняемых пород (туя, кипарисовик, тис, ели, тсуги, псевдотсуги) должна быть на 3-5 °С выше, чем температура воздуха. Низкая температура и высокая влажность может привести к загниванию черенков. В теплых стеллажных парниках с электроподогревом и туманообразующими установками укореняемость и качество посадматериала на 15-25% выше, чем в холодных парниках.

Время черенкования

Полезно знать, что имеет значение место расположения на кроне маточного растения побегов, предназначенных для срезки на черенки. У стелющихся и кустовых хвойных место взятия черенка роли не играет, можно выбирать наиболее развитую часть, хорошо освещаемую солнцем (особенно у пестро окрашенных сортов). У колонновидных и пирамидальных растений для черенкования берут побеги первого-третьего порядка в центре кроны. Саженцы из таких черенков будут гарантировано сохранять форму кроны родительского сорта. С другой стороны, зная это свойство, можно получить раскидистые либо почти стелющиеся экземпляры ели или тиса, используя для черенкования боковые, растущие горизонтально ветки.

Технология нарезки черенков

Дмитрий Кизулев, д. Станички Смоленской обл.

4 Уход

Также к видам болезни пихты корейской относятся гниль и елово-пихтовый хермес (белый, похожий на вату налет на хвое или ветках). На самом деле Хермес (Adelgidae) — это тля, личинки которой покрыты длинными восковыми волосками. Именно поэтому визуально данные насекомые смотрятся как белый налет. Личинки хермеса высасывают из растения соки, в итоге иголки пихты желтеют. Взрослым деревьям хермес не может причинить смертельной опасности, однако, они замедляют рост растений, ослабляют его и портят хвою. Молодые пихты от большого скопления хермеса могут погибнуть, поэтому важно один раз в 3-4 недели опрыскивать заболевшие деревья инсектицидом. Также в борьбе с хермесом помогает обработка деревьев золой, настоем чеснока или зеленым мылом.

Предпосадочная подготовка

Пихта корейская – растение достаточно светолюбивое, кроме того, требовательное к влажности почвы. Однако это не означает, что этому дереву подойдет болотистая местность – продолжительное затопление для пихты корейской губительно. О том, как сажать пихту корейскую, можно получить информацию из специализированных справочников, однако специалисты отмечают, что посадка пихты корейской мало чем отличается от посадки других растений этого семейства.

Старкерс Дварф (Starkers Dwarf)

– невысокая форма, вырастающая не более четырех метров в высоту, имеющая короткую голубовато-зеленую хвою.

Где и как происходит укоренение?

Блу Стандарт (Blue Standard)

Размножаются пихты семенами, которые надо сеять под зиму в бороздки глубиной до двух сантиметров. Семена заготавливают осенью, когда созревают шишки. Посев допустимо делать и после стратификации – весной. Сорта можно размножать вегетативным способом – отводками и черенками, срезанными с молодых растений. Но при этом надо иметь в виду, что без специальной обработки препаратами, стимулирующими корнеобразование, черенки приживаются очень плохо.

Надеемся наши советы пригодятся всем начинающим садоводам и помогут сделать ваши усадьбы еще красивее и уютнее.

В теплице или парнике поддерживают идеальную чистоту, не допуская образования мха, проветривают, убирают растительные остатки и погибшие черенки. Периодически посадки обрабатывают раствором фунгицида для предотвращения загнивания.

Высадка черенков хвойных

Важно также правильно выбрать время для нарезки черенков. Начало весны считается наиболее удачным. После зимнего охлаждения и относительного покоя в самом начале сокодвижения, лучше в пасмурную погоду и рано утром, когда еще не жарко и нет иссушающих ветров. Заготовленные ранней весной черенки укоренятся в этом году. При летнем черенковании в начале одревеснения и затвердения молодых в первый год образуется только каллюс, а корни – в следующем году. Также можно проводить черенкование после окончания активного роста и начала одревеснения побегов в августе или одревесневшими побегами в сентябре-ноябре, тогда укоренение их произойдет только на следующий год.

Уход за черенками

Добавить в закладки:

Ещё один распространенный вид болезни пихты корейской – поражение пихтовой пяденицей. Этот вредитель широко распространен в европейской части России, в Приамурье, Приморье, Западной Сибири, а также в Крыму и на Кавказе.

Высадка на постоянное место

Пихта корейская, посадка и уход за которой не слишком сложны, размножается не только вегетативным способом, но и семенами. Их высевают поздней осенью в специальные бороздки на глубину до двух сантиметров. Возможно высеивать семена и весной, после стратификации (длительного выдерживания при определённой температуре для ускорения прорастания).

– карликовая, высотой до 60 см и шириной до 70 см; имеет тонкую и нежную хвою, нуждающуюся в защите от солнца.

vashsad.ua

Неприхотливая красавица пихта. Посадка и размножение пихты

Пихта из семян

Вегетативное размножение пихты

Посадка

Уход

Дмитрий Кизулев, д. Станички Смоленской обл.

Как размножать пихту черенками, веточками: как укоренить, посадить, вырастить

Пихта черенками размножается достаточно просто. При соблюдении всех рекомендаций с этим справятся даже новички в садоводстве. В зависимости от того, в какое время заготавливают черенки, существуют определенные правила их подготовки и хранения. Можно также вырастить пихту из ветки.

Можно ли пихту размножить черенками и ветками

Черенкование часто используют для размножения хвойных культур, чтобы сохранить все родительские декоративные качества. При выращивании из семян происходит утеря некоторых внешних свойств.

Размножать пихту черенками достаточно просто, главное – соблюдать правила по уходу. Также важно найти здоровое дерево-родитель и своевременно нарезать побеги, придерживаясь определенных сроков.

Внимание! Даже при соблюдении всех необходимых условий приживаемость у пихты весьма низкая — 30-40% от всех посаженых черенков.

У размножения черенками есть ряд преимуществ:

сохранение признаков сорта;
даже новичок может справиться с этим;
саженцы обладают большой выносливостью.

Пихта – популярное садовое растение, его лучше размножать черенками для сохранения сортовых признаков

Посадить пихту черенком — метод эффективный, но его пока применяют реже, чем для тех же туи и кипарисовика. Альтернативными способами выступают семенное размножение и прививка.

Оптимальные сроки черенкования пихты

Подготовку черенков начинают ранней весной или уже осенью. Также можно провести процедуру в начале или в конце лета. Самое оптимальное время для подготовки посадочного материала – это весна, когда активное сокодвижение еще не началось. Для южных областей это март, для более холодного климата следует дождаться апреля. Черенки нарезают утром или в пасмурный, но не дождливый день. Не стоит это делать под прямыми лучами солнца. При подготовке посадочного материала весной побеги укоренятся уже в текущем году.

Допустимо проводить черенкование в июне, когда растение интенсивно развивается. Но в этом случае полноценная корневая система разовьется только на следующий год. В текущем сезоне образуется только каллюс.

Важно! Каллюс – соединительная ткань, разрастающаяся вокруг раны для ее защиты от внешних воздействий.

Если в начале лета время упущено, то черенки можно подготовить и в августе. В данный период они притормаживают свой рост, и начинается одресневение. До ноября заготавливают зимние черенки.

При заготовке побегов летом и весной их укореняют сразу, а при сборе осенью хранят в прохладном проветриваемом помещении до следующего сезона. Температура для черенков должна поддерживаться на уровне до + 5 °С. Такие условия можно создать, поместив посадочный материал в контейнеры и убрав их в холодильник. В следующем сезоне уже получится вырастить пихту из черенка.

Особенности размножения пихты черенкованием

Процесс состоит из нескольких этапов, которые важно провести правильно. Сюда входит выбор черенков, их подготовка и правильное хранение. Также правильный подбор субстрата, емкостей и поддержание нужного микроклимата.

Заготовка и хранение черенков

Самые хорошие черенки получаются с деревьев возрастом от 5 до 8 лет. Побеги срезают с верхней части растения. Нижние ветви укореняются значительно хуже, а затем появляется риск, что ствол искривится, и крона будет формироваться неправильно.

Чтобы вырастить пихту из веточки, берут здоровые и крепкие побеги первого года жизни длиной не менее 10 см и не более 20 см. Надо следить, чтобы на них присутствовала верхушечная почка. Рекомендуется соблюдать осторожность, потому что при повреждении этой почки можно получить кривой ствол и крону неправильной формы.

Укореняемость черенков практически всех хвойных низкая, в среднем составляет 50%

Для срезки используется секатор или нож, который необходимо заранее продезинфицировать. Срез располагают на 1 см вниз от перехода зеленого к коричневому, то есть от участка одревесневения.

Как укоренить ветку пихты

Для укоренения можно использовать ветки, имеющие двухлетнюю древесину в основании. Их не срезают, а просто резко отрывают от ствола. Снизу по высоте 5-6 см убирают иголки и мелкие веточки. Именно отсюда появятся новые корни.

Ветки не надо помещать в воду, сразу приступают к их укоренению. Если побеги сорваны осенью, то их рекомендуют опрыскать водой и обернуть влажной тряпкой. Если соблюдать правила, то вполне реально из ветки пихты вырастить целое дерево.

Как укоренить черенок пихты

Черенки, которые уже готовы к посадке, помещают в стимулятор роста корневой системы. Пихте необходима такая обработка, потому что процент укоренения достаточно небольшой. Побеги нельзя держать в данных составах более 24 часов.

Совет! Можно также использовать препараты для стимуляции роста в сухом виде, то есть, нанося их на низ черенка.

Также рекомендуется продезинфицировать конец побега, опустив его в раствор марганцовки или Фундазол. Такие меры являются хорошей профилактикой грибковых заболеваний, что повышает шансы успешно укоренить веточку пихты.

Выращивание пихты из черенков в домашних условиях

Для черенкования пихты в домашних условиях зимой необходимо приготовить субстрат из перегноя, песка и дерновой земли. Все части берут в равных долях. Если грунт с огорода, то он нуждается в дезинфекции, например, путем прогревания в духовке.

В качестве тары можно взять емкости из пластика высотой не более 15 см. Обязательно надо проделать дренажные отверстия, чтобы лишняя влага уходила от корней.

Порядок черенкования пихты зимой:

В тару засыпают субстрат, так чтобы сверху был слой песка.
Черенки помещают на глубину 5-6 см под углом 45°. Расстояние между растениями выдерживают в 10 см.
Субстрат необходимо обильно полить.
Саженцы прикрывают пленкой.

Корни появятся примерно через 9 месяцев, им предшествует образование каллюса. Однако наличие разросшейся соединительной ткани не гарантирует то, что черенок приживется.

Микроклимат

Чтобы черенки пихты успешно укоренились, надо создать им определенный микроклимат. Температуру должна поддерживаться на уровне + 20-25 °С, влажность не менее 90%. Свет должен быть рассеянным. При коротком дне растения подсвечивают специальными лампами.

Важно! При укоренении световой день саженцев не должен быть меньше восьми часов в сутки.

Пересаживать пихту на постоянное место лучше всего с комом земли из горшка

Полив и подкормки

После того как черенок пихты укоренится, ему необходимы опрыскивания каждые 3-4 дня. Влага должна попадать непосредственно под корень, чтобы не мочить хвою. Первую подкормку проводят спустя две недели после пересадки пихты. Обычно используют комплексные удобрения для хвойных растений. Иногда рекомендуется устраивать саженцам душ, чтобы очистить их от загрязнений. Но делать это слишком часто не рекомендуется.

Посадка черенков пихты в открытый грунт

Для посадки черенков пихты в открытый грунт надо выбирать хорошо освещаемое место. Допускается также размещать растение в полутени. Почва должна быть влажной, с хорошим дренажем. В городе пихту не сажают, так как культура плохо переносит загрязненный воздух.

После того как почву подготовили, надо дать ей осесть в течение 2-3 недель и только потом помещать туда пихту. Порядок высаживания пихты следующий:

Необходимо подготовить лунки диаметром 40-45 см и глубиной 50 см.
На дне размещают щебень или керамзит слоем порядка 10 см.
Черенки извлекают из тары, стараясь не повредить земляной ком.
Пихту размещают в лунки и засыпают корни землей.
После посадки нужен обильный полив.
В конце посадки надо прикрыть колпаками из бумаги.

Первые годы пихта развивается медленно, поэтому важно обеспечить молодым растениям правильный уход. Полив нужен регулярно, но нельзя допускать застой воды в почве. Землю необходимо рыхлить на глубину 20-25 см, чтобы не допустить образования корки на поверхности и обеспечить доступ кислорода к корням. Для подкормок используют минеральные комплексы. Например, можно взять удобрение Кемира. Мульчируют почву опилками или торфом, размещая их в приствольном круге. Не стоит забывать и о своевременном удалении сорняков. Зимой пихту укрывают специальным садовым полотном или лапником.

Размножение пихты черенками в домашних условиях можно посмотреть видео:

Заключение

Пихта черенками размножается, в основном, чтобы сохранить сортовые признаки родительского растения. Несмотря на то, что приживаемость у хвойных не очень высокая, пихта вполне успешно размножается черенками. Можно укоренить их в грунте в текущем сезоне или выращивать зимой в домашних условиях. Оба способа используют, они показывают хорошие результаты.

Пихта. Посадка, выращивание и уход

В последнее время мало кто не слышал о таком хвойном дереве, как пихта. Ее основная география распространения – это кедровые и смешанные леса, но благодаря лечебным свойствам и красивому внешнему виду пихта нашла применение и при декорировании садовых участков. Чем же так хороша пихта и почему она приобрела такую популярность?

Пихта: что это и чем отличается от ели?
Наиболее часто встречаемые разновидности пихт
Как осуществить посадку пихт?
Выращивание и уход за пихтой
Требования по уходу в зимнее время
Меры по борьбе с вредителями
Применение пихты и ее полезные свойства

Пихта: что это и чем отличается от ели?

Пихта представляет собой вечнозеленое дерево, имеющее плотную крону узкой конусной формы. Ветки часто опускаются до самой земли, что дает пихте использовать одну из своих особенностей размножения: при соприкосновении веток с землей последние приживаются в грунте и пускают корни, что в свою очередь дает возможность прорасти отдельной пихте.

Часто пихты путают с елью, особенно издалека. Это не относится к декоративным сортам, имеющим легко узнаваемый вид. Тем не менее, есть несколько основных различий между двумя деревьями:

Первым отличием становится хвоя. У елей иголки достаточно колючие. В то время как у пихты наоборот, хвоя мягкая и бархатистая.

Вторая отличительная особенность – это внешний вид и расположение шишек. У ели они висят на ветках и направлены строго вниз, а у пихты растут вертикально.
Пихта источает более мягкий и приятный запах.
Для посадки на участке пихта подходит лучше, поскольку обладает правильной симметричной формой и плотной структурой, что позволяет использовать ее в качестве ветрозащитных и декоративных насаждений.

В последнее время пихта успешно вытесняет ели с позиции новогоднего праздничного дерева. Несмотря на то, что в странах СНГ по-прежнему отдают предпочтение елкам, многие европейцы переходят на более красивую и утонченную пихту, поскольку в отличие от первой, хвоя пихт не осыпается даже при полном высыхании.

Наиболее часто встречаемые разновидности пихт

Указанный род хвойных насчитывает около 50 разновидностей, но стоит рассмотреть и дать характеристику тем сортам, которые приобрели наибольшую популярность:

Сибирская пихта: представляет собой самый распространенный и часто встречаемый вид. Отличается высокой морозоустойчивостью, но вместе с тем достаточно теплолюбива и требовательна к условиям. Особо ценится за декоративные свойства, поскольку весной окрас шишек приобретает сочетания пурпурного и ярко-желтого оттенков.
Белая пихта. Свое название получила от окраса хвои: по всей длине зеленого листочка проходят две белые полоски. Такой цвет отлично подходит для декорирования. Поскольку данный сорт чувствителен к загрязнению воздуха и почвы, то в плане распространения уступает сибирской и кавказкой. Более того, при температуре ниже -25°С подвой вымерзает, поэтому такая разновидность не подходит для большинства регионов.

Одноцветная пихта. Полезная разновидность, для которой характерна нечувствительность к условиям, в том числе и городскому загрязнению. К тому же отличается большим разнообразием декоративных сортов. Она нашла свое широкое применение в озеленении и ландшафтном дизайне.
Карликовая пихта. Является одной из наиболее любимых садоводами, поскольку ее предпочтительно высаживать на небольших участках. Такие пихты отличаются медленным ростом и привлекательным внешним видом, поэтому ее хорошо использовать для декорирования цветочных клумб.
Кавказская пихта, которая еще носит название пихта Нордмана, пользуется наибольшей популярностью у европейцев в период рождества в качестве праздничного дерева для украшения. Согласно преданиям, именно из древесины этой пихты был построен знаменитый Троянский конь.

Как осуществить посадку пихт?

Сам процесс не отличается трудоемкостью и не требует особых познаний. Всё, что понадобится – это следовать практическим советам и помнить про особенности предоставляемых саженцам условий. Работу предпочтительно поделить на несколько этапов:

Подготовка к посадке. Под саженец необходимо заблаговременно, за две недели до посадки, выкопать яму глубиной не больше 80 см. Диаметр ямы должен соответствовать размеру корневой системы саженца.
Пихта, фото которой представлено ниже, демонстрирует плохой пример размещения. Расстояние между деревьями должно быть достаточным для свободного роста.

Подготавливается питательная смесь для саженцев, состоящая из таких компонентов:
- две части глинистой почвы,
- три части листовой земли или перегноя,
- одна часть торфа,
- одна часть промытого мелкозернистого песка.
После того, как смесь была приготовлена, стоит добавить в неё еще 10 кг древесных опилок и 200 г азотных удобрений.
На дно посадочных ям, особенно если земля характеризуется высоким уровнем грунтовых вод, необходимо укладывать слой битого кирпича или щебня разных фракций, толщиной не менее 20 см.
Дно ямы разрыхляется на глубину до 15 см и заблаговременно пропалывается, чтобы очистить землю от сорняком и природного мусора.
Сажать пихты рекомендуется либо в начале весны, в апреле, либо же осенью, в течение сентября. Лучшим выбором станут те саженцы, которым уже не менее 5 лет, поскольку практически все разновидности пихт отличаются медленным ростом. При посадке важно обратить внимание на почву: она должна иметь достаточную влажность. Желательно, чтобы работа по высадке пихт на участок производилась в теплый пасмурный день, вплоть до проведения работ во время дождя.
Когда была выкопана яма соответствующего размера, саженец размещают на присыпанную землей питательную смесь. Корни пихты располагаются горизонтально, с размещением корневой шейки по глубине уровня земли.

Целесообразно размещать саженцы пихты на расстоянии не менее трех метров, в случае посадки декоративных видов есть смысл размещать их в шахматном порядке. Важно знать, что практически все разновидности пихт предпочитают хорошо увлажненную почву в виде суглинка, которая вдобавок должна своевременно обеспечиваться подкормкой и удобрениями. Кроме этого, пихты обладают развитой корневой системой, которая обеспечивает их ветроустойчивость.

Как видно, посадка пихты достаточно проста и мало чем отличается от аналогичных действий с другими деревьями. Тем не менее, важно так же предоставить должный уход, чтобы саженец был обеспечен всем необходимым во время своего развития.

Важно: семена пихты не подходят для размножения, так как проростить их в домашних условиях крайне сложно. Поэтому используют только саженцы.

Выращивание и уход за пихтой

Полезным качеством пихты является ее нетребовательность к тщательному уходу. Впрочем, это не означает, что простого периодического полива достаточно для хорошего роста саженца. Важно знать про некоторые тонкости обеспечения должного ухода, чтобы пихта прожила долгую жизнь.

Место посадки должно стать первым и последним, поскольку практически все сорта этого хвойного дерева не терпят пересадок.
Саженцы пихты нужно поливать раз в две недели, при этом желательно применять такой метод полива, как дождевание. Под ним подразумевается орошение земли через систему насадок, по которым вода равномерно разбрызгивается по окружающей территории.
Землю возле ствола саженца необходимо своевременно разрыхлять на глубину до 10 см для противодействия росту сорняков.

Имеет смысл периодически засыпать поверхность грунта возле саженца пихты опилками, при этом не допуская забивание корневой шейки.
Весной, оптимальнее всего в апреле, производить подкормку пихты минеральными удобрениями. Как правило, рекомендуется это делать не реже раза в год. При необходимости второй раз удобрять имеет смысл уже не ранее наступления сентября.

Пихта, выращивание которой займет не один год, станет полезным приобретением на дачном участке. Учитывая их продолжительность жизни, у некоторых сортов достигающая 700 лет – стоит быть уверенным, что результаты хорошего труда станут видны и последующим поколениям.

Требования по уходу в зимнее время

Кроме указанных действий, пихту необходимо подготовить под зимовку. Несмотря на то, что многие сорта этого хвойного дерева отличаются морозостойкостью, имеет смысл позаботиться о защите молодой поросли во избежание дальнейшего высыхания во время заморозков. Зачастую возникает проблема, когда на хвою оказывают влияние яркие солнечные лучи, которые испаряют влагу. При этом, холодный пагубно отражается на корневой системе. Все указанное способно привести к подгоранию хвои весной, и чтобы этому противостоять – целесообразно покрыть молодые посадки защитной тканью либо же лапником. Плотный полиэтилен так же подойдет для этой цели.

Помимо вышеперечисленного, важно знать, что основная часть работы по уходу за пихтой заключается в борьбе против вредителей и заболеваний. Сочная зелень пихты является весьма притягательной для паразитов, поэтому немало времени уйдет на принятие соответствующих мер. Есть некоторые разновидности пихты, сорта которой более устойчивы к воздействию паразитов, но полного иммунитета нет ни у одной разновидности.

Меры по борьбе с вредителями

Имеет смысл категорировать основные виды опасностей, способных оказать влияние на поросль, особенно молодую:

Крылатая тля. Основным признаком ее появления служит возникновение белого налета, характерного своей пушистостью. В случае, если пораженные участки имеют малую площадь – то достаточно обрезать их. Если же заражение ушло вглубь, то рекомендуется подвергнуть хвою обработке химическими препаратами класса инсектицидов.
Ложнощитовка являет собой еще одного распространенного вредителя, характерной чертой которого служит появления блестящих следов на хвое и ее дальнейшее осыпание. Некоторые участки также станут изменять окраску – с сочно-зеленой на бурую. Как и в случае с тлей, необходимо применять препараты для обработки хвои. Так же, садоводы рекомендуют одевать защитные пояса из мешковины, пропитанные так называемым гусеничным клеем, на который и станут попадать личинки вредителя.
Паутинный клещ представляет одну из самых больших опасностей. При его появление хвоя пихты изменяет окраску и впоследствии опадает. Кроме этого, паутина покрывает поверхность веток – что сразу становится заметным. Первый метод противодействия появлению клеща – это своевременное увлажнение пихты, поскольку клещ появляется при сухом климате и недостаточной обработке. Настойка из одуванчиков так же представляет собой эффективное средство борьбы и, что немаловажно, не содержит никаких химических компонентов, способных нанести вред. Приготовить такой настой легко: достаточно измельчить 300 г листьев и залить 10 литрами теплой воды, после чего настой выдерживают в течении трех часов. Далее необходимо обработать полученным средством хвою пихты.
Гусеницы – еще одни частые гости. На их присутствие указывает наличие слизи на веточках пихты. Явление неприятное, но к счастью, их легко побороть с помощью овощных настоев. К примеру, лукового или помидорного. Луковые представляет собой один из самых простых в приготовлении: на 1 литр воды используют 10 г мелко нарезанного лука. Настой нужно выдержать в течении 7 часов, после чего можно начинать обработку. Настой из помидоров потребует более тщательного приготовления и наличия 4 кг корней и листьев указанной овощной культуры, которые необходимо залить водой и кипятить в течении 30 минут на слабом огне. После чего полученное варево процеживается и разбавляется свежей водой из пропорции три части воды на одну часть настоя. Полезным добавлением станет еще использование в нем 40 г жидкого мыла.

Против вредителей и паразитов лучше помогают препараты на основе биологических натуральных добавок. К примеру, хорошими представителями являются Новосил и Экосил. Что интересно, они изготавливаются на основе смолы и хвои пихт, так что по сути, хвоя обрабатывается хвоей. Их использование позволит саженцам поднять природный иммунитет против воздействия болезней и вредителей.

Помимо этого, вред пихте наносят именно климатические условия, резкие перепады жаркой и влажной погоды, а также истощенный грунт. Поэтому важно своевременно обрабатывать землю и молодую поросль полезными органическими добавками.

Применение пихты и ее полезные свойства

Растение пихта ценно не одними декоративными свойствами. Народная молва приписывает ей необычайно широкие свойства: начиная от укрепления организма с помощью настоек до лечения патологий. Если этому верить, то выходит, что пихта способна исправить практически все проблемы со здоровьем. И несмотря на явный рекламный эффект, специалистами подтверждено, что настои и масла пихты способны оказывать сильное лечебное воздействие на воспалительные процессы. Кроме пихту рекомендуют при следующих проблемах:

кашель,
дифтериз,
простудные заболевания, включая разные формы гриппа,
воспаление десен,
ревматизм.
простатит,
наружные проблемы с кожей,
обработка ран и многое другое.

Как видно, пихта представляет не только ценное декоративное, но и весьма полезное растение, широко известное своими целебными свойствами.

Выращивание и выращивание хвойных пород – Пихта Дугласова

Резюме

Как и гибрид лиственницы, селекция пихты Дугласовой (DF) имела периоды подъема и спада интереса. Плюс деревья были отобраны в 1950-х годах, и с тех пор до первой половины 1970-х периодически проводились испытания потомства; Всего 26 тестов в 10 сериях. Тогда было сочтено, что посадки недостаточно, чтобы оправдать дорогостоящую программу разведения.

Первоначальная коллекция семян Дэвида Дугласа в 1826 году была довольно маленькой, и полученные из нее деревья дали первые коллекции британских семян, которые были широко распространены среди землевладельцев.Более поздние введения в 1850-х годах вместе с материалом Дугласа легли в основу некоторых ранних выборок плюсовых деревьев. Следовательно, многие из этих выборок были тесно связаны, и явные признаки инбридинговой депрессии часто проявлялись в тестах на раннее потомство, особенно среди полных сибсов.

Интерес возобновился в начале 1990-х годов, когда в рамках партнерства с рядом других европейских стран было проведено 12 экспериментов с участием примерно 350 семейств с открытым опылением от родительских деревьев, отобранных в штатах Вашингтон и Орегон (США).Данные относительно недавних экспериментов все еще собираются. Цель состоит в том, чтобы проанализировать все испытания потомства DF на высоту и прямолинейность стебля и построить племенные и производственные популяции.

Не предполагается, что разведение продолжится до второго поколения.

Публикация

Выбор источников семян пихты Дугласовой для использования в Великобритании

Авторы: А. Флетчер и С. Самуэль.

Бюллетень лесной комиссии 129.

Бюллетень заказа 129.

Что представляет интерес

Для получения более подробной информации см. Следующие разделы
Пятьдесят лет селекции деревьев в Великобритании :

Первые годы

Программа тестирования потомства в полевых условиях

Производство улучшенного материала

В будущее

Связанные страницы

Выращивание деревьев и лесоводство: прирост объема пихты Дугласовой с минимальной потерей качества древесины при переменной плотности посадки

Основные характеристики

•: Генетический прирост объема / га (29%), связанный с незначительной потерей качества древесины (−4 %).
•: Более высокая рабочая плотность посадки: больший прирост объема и меньшая потеря качества древесины.
•: Генетический прирост, зависящий от площади, соответствует оценкам, полученным в результате моделирования испытаний потомства.

Реферат

Проверка производительности генетически отобранных деревьев при реалистичных сценариях посадки имеет важное значение для уверенности в программах селекции деревьев. Количественная оценка относительного воздействия генетического отбора и начальной плотности посадки на размер и качество деревьев может служить дополнительным ориентиром для практических методов ведения лесного хозяйства.Мы оцениваем прирост объема, выживаемость, качество ствола и качество древесины на 20-летних деревьях, представляющих три уровня генетической селекции, которые были выращены при четырех исходных плотностях посадки. Работая в испытании реализованного прироста прибрежной пихты Дугласа ( Pseudotsuga menziesii var. menziesii (Mirb.) Franco) на пяти повторных участках, мы спрашиваем: ? (2) Могут ли планы делянки с одним деревом, моделирующие испытания потомства, давать надежные результаты по сравнению с планами с крупными блоками, моделирующими реалистичные сценарии посадки? (3) Если деревья, отобранные для увеличения объема, демонстрируют снижение качества древесины и стволов по сравнению с контролем над дикими древостоями, можно ли эффективно управлять этим путем изменения плотности посадки? Поскольку испытания молодого потомства используются для оценки генетического прироста объема деревьев в возрасте ротации 60 лет, мы используем модель роста и урожайности, откалиброванную для контроля диких насаждений, чтобы оценить, соответствуют ли генетически отобранные семьи прогнозам в возрасте 20 лет.В среднем наблюдаемые объемы насаждений превышали прогнозы на четырех из пяти участков и на трех из четырех первоначальных плотностей посадки. На уровне участка по плотности посадки популяция с умеренным генетическим приростом (средний прирост) превысила прогнозы в 13 из 20 раз, в то время как популяция с наибольшим генетическим приростом (верхние скрещивания) превысила прогнозы в 11 из 20 раз. Это соответствует ожиданиям в отношении племенных ценностей, которые призваны отражать общую производительность, усредненную во всех средах. Используя другой подход к валидации, дизайны с крупными блоками показали лучшую эффективность по сравнению с дизайнами испытаний с моделированием потомства.Очень высокая плотность посадки (1890+ стеблей / га) может минимизировать потери качества древесины генетически отобранного посадочного материала, но эффекты относительно незначительны, в то время как хорошие показатели по всем признакам наблюдались при рабочей плотности посадки (~ 1189 стеблей / га). Измерения плотности древесины и угла микрофибрилл в верхних крестах показали относительно незначительные и незначительные потери (от -1,1 до -4,0%) по сравнению с большим и значительным приростом объема на гектар в возрасте 20 лет (29,0%) при усреднении значений 1189 и 1890 стеблей / га.В целом, системы генетической селекции дают надежные результаты по целому ряду качеств участков.

Ключевые слова

Генетический прирост

Система генетической селекции

Испытания реализованного прироста

Модели роста и урожайности

Улучшение деревьев

Продуктивность леса

Компромиссы

Спад короны

Толщина веток

плотность

Акустическая скорость

Резистограф

Размер дерева

Pseudotsuga menziesii

Рекомендуемые статьи Цитирующие статьи (0)

Просмотр аннотации

Цитирующие статьи

Специальная селекция генетически обедненного ландраса пихты благородной (Abies procedure Rehder) с использованием генотипирования SNP посредством высокопроизводительного целевого секвенирования

Barner H, Roulund H, Qvortrup SA (1980 г. ) Abies processra поставка семян и выбор происхождения OT: Abies processra frøforsyning og proviensvalg. Данск Сковфорнингс Тидсскрифт 65: 263–295

Google Scholar

Chastagner GA, Staley JM, Riley KL (1990) Некроз иглы текущего сезона: заболевание иглы неизвестной этиологии на благородных и величественных рождественских елках на северо-западе Тихого океана.С. 38-42. В: Merrill, W. and M.E, Ostry (Eds). Последние исследования болезней листвы, материалы конференций, gen tech. Представитель Wo-56 Вашингтон, округ Колумбия, Лесная служба Министерства сельского хозяйства США. 145p

Cremer E, Liepelt S, Sebastiani F, Buonamici A, Michalczyk IM, Ziegenhagen B, Vendramin GG (2006) Идентификация и характеристика ядерных микросателлитных локусов в Abies alba mill. Mol Ecol Notes 6: 374–376

CAS Статья Google Scholar

Датская служба землеустройства (1979) Отчет о регистрации FP623 [на датском языке].Hedeselskabet, Krogårdsvej 6, DK-8882 Fårvang

David A, Pike C, Stine R (2003) Сравнение методов селекции для оптимизации генетического прироста и генетического разнообразия в рассадном саду красной сосны ( Pinus Resinosa Ait.) . Theor Appl Genet 107: 843–849

CAS Статья Google Scholar

Doede DL, Adams WT (1998) Генетика объема стебля, формы стебля и характеристик ветвей у молодых деревьев пихты благородной.Silvae Genetica 47 (4): 177–183

Google Scholar

Dungey HS, Dash JP, Pont D, Clinton PW, Watt MS, Telfer EJ (2018) Фенотипирование целых лесов поможет отслеживать генетические характеристики. Trends Plant Sci 23 (10): 854–864. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2018.08.005

CAS Статья Google Scholar

Эль-Кассабы Ю.А., Лстибёрек М. (2009) Селекция без разведения.Genet Res 91: 111–120

Статья Google Scholar

Falconer DS (1989) Введение в количественную генетику, 3-е изд. Харлоу, Эссекс, Великобритания: Longman Scientific & Technical. 438стр. ISBN 0-470-21162-8

Фишер Р.А. (1918) Корреляция между родственниками на основе предположения о менделевской наследственности. Trans R Soc Edin 52: 399–433

Статья Google Scholar

Франклин JF (1990) Пихта благородная ( Abies Procedure Rehd.). В кн .: Сильвики Северной Америки 1. Хвойные породы. Справочник по сельскому хозяйству 654 (ред. Burns RM, Honkala BH), Министерство сельского хозяйства США, Лесная служба, Вашингтон, округ Колумбия

Gilmour AR, Cullis BR, Verbyla AP (1997) Учет естественных и посторонних вариаций при анализе поля эксперименты. J Agr Biol Envir St 2: 269–293. https://doi.org/10.2307/1400446

Статья Google Scholar

Gilmour AR, Gogel BJ, Cullis BR, Thompson R (2006) Руководство пользователя ASReml, выпуск 2.0. VSN International Ltd. Хемел Хемпстед, Великобритания

Гилмор А.Р., Гогель Б.Дж., Каллис Б.Р., Томпсон Р., Батлер Д. (2009) Руководство пользователя ASReml, выпуск 3.0. VSN International Ltd, Хемел Хемпстед, Великобритания

Grattapaglia D, Ribeiro VJ, Rezende GDSP (2004) Ретроспективный отбор элитных родительских деревьев с использованием тестирования на отцовство с помощью микросателлитных маркеров: альтернативная краткосрочная тактика разведения для Eucalyptus . Theor Appl Genet 109: 192–199

CAS Статья Google Scholar

Grattapaglia D, Silva-Junior OB, Resende RT, Cappa EP, Müller BSF, Tan B, Isik F, Ratcliffe B, El-Kassaby YA (2018) Количественная генетика и геномика сходятся для ускорения разведения лесных деревьев.Front Plant Sci 9: 1693. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01693

Статья PubMed Central PubMed Google Scholar

Хансен О.К., МакКинни Л.В. (2010) Проведение квазиполевых испытаний в Abies nordmanniana – испытание нового подхода к селекции лесных деревьев. Древовидные генетические геномы 6: 345–355. https://doi.org/10.1007/s11295-009-0253-6

Статья Google Scholar

Hansen OK, Nielsen UB (2010) Микросателлиты, используемые для установления полной родословной в испытании полусиба и корреляции между количеством мужских стробилов и успехом в отцовстве.Ann For Sci 67: 703–703. https://doi.org/10.1051/forest/2010028

Статья Google Scholar

Hansen OK, Vendramin GG, Sebastiani F, Edwards KJ (2005) Разработка микросателлитных маркеров в Abies nordmanniana (Stev.) Spach и межвидовая амплификация в роде Abies . Мол. Ecol. Примечания 5: 784–787

CAS Статья Google Scholar

Hedrick PW, Savolainen O, Karkkainen K (1999) Факторы, влияющие на степень депрессии инбридинга: пример сосны обыкновенной.Наследственность 82: 441–450

Статья Google Scholar

Isik F (2014) Геномная селекция в селекции лесных деревьев: концепция и перспективы на будущее. Новое для 45: 379–401. https://doi.org/10.1007/s11056-014-9422-z

Статья Google Scholar

Josserand SA, Potter KM, Johnson G, Bowen JA, Frampton J, Nelson CD (2006) Выделение и характеристика микросателлитных маркеров у пихты Fraser ( Abies fraseri ).Примечания к Mol Ecol 6: 65–68

CAS Статья Google Scholar

Kalinowski ST (2005) HP-RARE 1.0: компьютерная программа для выполнения разрежения по мерам аллельного богатства. Мол. Ecol. Примечания 5: 187–189

CAS Статья Google Scholar

Kalinowski ST, Taper ML, Marshall TC (2007) Пересмотр того, как компьютерная программа CERVUS учитывает ошибки генотипирования, увеличивает успех в установлении отцовства.Mol Ecol 16: 1099–1106

Статья Google Scholar

Koskela J, Vinceti B, Dvorak W, Bush D, Dawson IK, Loo J, Kjaer ED, Navarro C, Padolina C, Bordács S, Bordacs S, Jamnadass R, Graudal L, Ramamonjisoa L (2014) Использование и передача лесных генетических ресурсов: глобальный обзор. Для Ecol Manag 333: 22–34

Артикул Google Scholar

Lambeth C, Lee BC, O’Malley D, Wheeler N (2001) Селекция Polymix с родительским анализом потомства: альтернатива разведению и тестированию полных сибсов.Theor Appl Genet 103: 930–943. https://doi.org/10.1007/s001220100627

Статья Google Scholar

Landgren C, Nielsen UB, Chastagner GA (2017) Сравнение потомства благородной пихты из регионов сбора Тихоокеанского Северо-Запада США и Дании по признакам рождественской елки. Scand J For Res 32: 366–375. https://doi.org/10.1080/02827581.2017.1280077

Статья Google Scholar

Lange J (1999) История интродукции культурных растений в Дании ОТ: Kulturplanternes indførselshistorie i Danmark, второе изд.DSR forlag, Frederiksberg

Larsen JB, Møller IS, Nielsen UB (1997) Пихта благородная – вариация происхождения, селекция и выбор источника семян. ОТ: Nobilis – проверенная вариация, фордлинг и фрёкилдевальг. Данск Сковбругс Тидсскрифт 82: 193–202

Google Scholar

Ле Корре В., Кремер А. (2012) Генетическая дифференциация по локусам количественных признаков при локальной адаптации. Мол Экол 21 (7): 1548–1566. https: // doi.org / 10.1111 / j.1365-294X.2012.05479.x

Статья Google Scholar

Льюис П.О., Зайкин Д. (2001) Анализ генетических данных: компьютерная программа для анализа аллельных данных. Версия 1.1

Lian C, Goto S, Hogetsu T (2007) Микросателлитные маркеры для пихты Сахалин ( Abies sachalinensis master). Mol Ecol Notes 7: 896–898

CAS Статья Google Scholar

Линдгрен Д., Маллин Т.Дж. (1997) Уравновешивание усиления и родства при отборе.Silvae Genet 46: 124–128

Google Scholar

Линдгрен Д., Муллин Т.Дж. (1998) Родство и статус в семенных садах. Can J For Res 28: 276–283

Статья Google Scholar

Lstibrek M, Hodge GR, Lachout P (2015) Выявление генетической информации из коммерческих лесных плантаций – восполнение потерянного времени с помощью «селекции без селекции». Древовидные генетические геномы 11:55.https://doi.org/10.1007/s11295-015-0881-y

Статья Google Scholar

Линч М., Уолш Б. (1998) Генетика и анализ количественных признаков. Sinauer Associates, Сандерленд

Google Scholar

Marshall TC, Slate J, Kruuk LEB, Pemberton JM (1998) Статистическая достоверность для вероятностного вывода отцовства в естественных популяциях. Mol Ecol 7: 639–655

CAS Статья Google Scholar

Meuwissen THE, Hayes BJ, Goddard ME (2001) Прогнозирование общей генетической ценности с использованием плотных карт маркеров для всего генома.Генетика 157: 1819–1829

CAS PubMed Central PubMed Google Scholar

Моска Э, Крус Ф, Гомес-Гарридо Дж, Бьянко Л., Реллстаб С, Бродбек С., Чиллери К., Фади Б., Фладунг М, Фусси Б., Гемери Д., Гонсалес-Мартинес СК, Гривет Д., Гут М Hansen OK, Heer K, Kaya Z, Krutovsky KV, Kersten B, Liepelt S, Opgenoorth L, Sperisen C, Ullrich KK, Vendramin GG, Westergren M, Ziegenhagen B, Alioto T, Gugerli F, Heinze B, Höhn M, Troggio M , Neale DB (2019) Эталонная последовательность генома европейской пихты пихты ( Abies alba Mill.): геномный ресурс, созданный сообществом. G3 (Bethesda) 9 (7): 2039–2049. https://doi.org/10.1534/g3.119.400083

CAS Статья Google Scholar

Nei M (1987) Молекулярная эволюционная генетика. Издательство Колумбийского университета, Нью-Йорк, Нью-Йорк

Книга Google Scholar

Ней М., Маруяма Т., Чакраборти Р. (1975) Эффект узкого места и генетическая изменчивость в популяциях.Evolution 29: 1–10

Статья Google Scholar

Nguyen-Dumont T, Pope BJ, Hammet F, Southey MC, Park DJ (2013) Подход ПЦР с высоким сплетением для массового параллельного секвенирования. Биотехнологии 55 (2): 69–74

CAS Статья Google Scholar

Nielsen UB (1994) Селекция пихты благородной ( Abies procra Rehder) и пихты Нордманна ( Abies nordmanniana (Stev.) Spach) для новогодних елок и зелени в Дании. Труды – Северная группа по селекции деревьев, Комиссия по лесному хозяйству, Эдинбург, Шотландия, 118–127

Nielsen UB (2000) Фордлинг нордманнсгран и знаток: Статус и мулигедер. 15, 1-54. Hørsholm, Forskningscentret для Skov & Landskab. Pyntegrøntserien

Nielsen UB (2003) Valg af danske nobilis proofienser til produktion af klippegrønt – статус для производства ungdomsgrene. Hørsholm, Skov & Landskab.Pyntegrøntserien

Google Scholar

Nielsen UB (2007) Генетическая изменчивость признаков, важных для выращивания благородной зелени пихты. Scand J For Res 22: 99–109

Статья Google Scholar

Nielsen UB, Hansen OK (2012) Генетическая ценность и разнообразие на протяжении 18 лет в саду клональных семян пихты Нордмана. Ann For Sci 69 (2012): 69–80

Статья Google Scholar

Nielsen CCN, Rasmussen HN (2009) Морозостойкость и отверждение в Abies procedure и других хвойных деревьях при различных температурных режимах и теплых обработках.Лесное хозяйство. 82 (1): 43–59. https://doi.org/10.1093/forestry/cpn048

Nielsen UB, Xu J, Nielsen KN, Talgø V, Hansen OK, Thomsen IM (2017) Видовые вариации восприимчивости к грибку Neonectria neomacrospora в род Abies . Scand J For Res 32 (5): 421–431. https://doi.org/10.1080/02827581.2017.1287300

Статья Google Scholar

Nielsen UB, Xu J, Hansen OK (2020) Генетика и возможности улучшения производства елки пихты Нордманна ( Abies nordmanniana (Steven) Spach).Древовидные генетические геномы. https://doi.org/10.1007/s11295-020-01461-z

Nisbet J (2009) Коллекционер. Дэвид Дуглас и естественная история северо-запада. Сиэтл, США: Sasquatch Books. п. 198–199

Парчман Т.Л., Янер Дж. П., Укеле К.А., Галланд Л.М., Эккерт А.Дж. (2018) Подходы и приложения RADseq для генетики лесных деревьев. Tree Genet Genomes 14:39. https://doi.org/10.1007/s11295-018-1251-3

Статья Google Scholar

Peakall R, Smouse PE (2006) GENALEX 6: генетический анализ в Excel.Популяционно-генетическое программное обеспечение для обучения и исследований. Mol Ecol Notes 6: 288–295

Статья Google Scholar

Peakall R, Smouse PE (2012) GenAlEx 6.5: генетический анализ в Excel. Программное обеспечение популяционной генетики для обучения и исследований – обновление. Биоинформатика 28: 2537–2539

CAS Статья PubMed Google Scholar

Peterson BK, Weber JN, Kay EH, Fisher HS, Hoekstra HE (2012) Двойной дайджест RADseq: недорогой метод обнаружения de novo SNP и генотипирования у модельных и немодельных видов.PLoS One 7 (5): e37135. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0037135

CAS Статья PubMed Central PubMed Google Scholar

Польша JA, Brown PJ, Sorrells ME, Jannink J-L (2012) Разработка генетических карт высокой плотности для ячменя и пшеницы с использованием нового подхода двухферментного генотипирования путем секвенирования. PLoS One 7 (2): e32253. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0032253

CAS Статья PubMed Central PubMed Google Scholar

Расмуссен К.К., Андерсен США, Фрауэнфельдер Н., Коллманн Дж. (2008) Микросателлитные маркеры для находящейся под угрозой исчезновения пихты Abies guatemalensis (Pinaceae).Mol Ecol Resour 8: 1307–1309

CAS Статья Google Scholar

Saito Y, Lian CL, Hogetsu T, Ide Y (2005) Разработка и характеристика микросателлитных маркеров у Abies firma и межвидовая амплификация у других японских видов Abies . Примечания Mol Ecol 5: 234–235

CAS Статья Google Scholar

Sansaloni C, Petrol C, Laccoud D, Carling J, Deterinh F, Grattapaglia D, Kilian A (2011) Технология Diversity Arrays (DArT) и секвенирование нового поколения объединены: полногеномное, высокопроизводительное, высокоинформативное генотипирование для молекулярного разведения Eucalyptus .BMC Proc 2011 5 (Дополнение 7): P54

SAS Institute Inc. 2013. Заявления SAS® 9.4: ссылка. Кэри, Северная Каролина

Six DL, Vergobbi C, Cutter M (2018) Выжившие разные? Генетический отбор деревьев горным сосновым жуком во время вспышки болезни в высокогорном сосновом бору, вызванной изменением климата. Front Plant Sci 9: 993. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.00993

Статья PubMed Central PubMed Google Scholar

Telfer E, Graham N, Macdonald L, Li Y, Klápště J, Resende M Jr, Neves LG, Dungey H, Wilcox P (2019) Панель секвенирования генотипа с высокой плотностью захвата экзома для лесного разведения в Pinus radiata .PLoS One 14 (9): e0222640. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0222640

CAS Статья PubMed Central PubMed Google Scholar

Tokarska M, Marshall T, Kowalczyk R, Wojcik JM, Pertoldi C, Kristensen TN, Loeschcke V, Gregersen VR, Bendixen C (2009) Эффективность микросателлитных и SNP-маркеров для анализа происхождения и идентичности у видов с низким генетическим разнообразием : случай с зубрами. Наследственность 103: 326–332

CAS Статья Google Scholar

Vendramin GG, Fady B, González-Martinez SC, Hu FS, Scotti I, Sebastiani F, Soto A, Petit RJ (2008) Генетически устаревший, но широко распространенный: пример средиземноморской сосны.Evolution 62-3: 680–688

Статья Google Scholar

Weir BS, Cockerham CC (1984) Оценка F-статистики для анализа структуры населения. Evolution 38: 1358–1370

CAS Google Scholar

White TL, Hodge GR (1988) Лучший линейный прогноз племенной ценности в программе улучшения лесных деревьев. Теоретическая прикладная генетика 76: 719–727. https: // doi.org / 10.1007 / BF00303518

CAS Статья Google Scholar

White TL, Adams WT, Neale DB (2007) Лесная генетика. CABI, Wallingford

Забронировать Google Scholar

Райт С. (1951) Генетическая структура популяций. Энн Евгеникс 15: 323–354

CAS Статья Google Scholar

Xu J, Nielsen UB, Hansen OK (2018a) Специальное разведение Abiesbornmülleriana для производства рождественской елки с использованием комбинации ДНК-маркеров и количественной генетики – тематическое исследование.Древовидные генетические геномы 14: 5. https://doi.org/10.1007/s11295-018-1276-7

Статья Google Scholar

Xu J, Hansen OK, Thomsen IM, Nielsen UB (2018b) Генетические вариации и генотип по взаимодействию с окружающей средой в восприимчивости Abies nordmanniana (Steven) Spach к грибку Neonectria neomacrospora (Manoth & Samuels) И Сэмюэлс. Ann For Sci 75 (1). https://doi.org/10.1007/s13595-018-0689-7

Zobel BJ, Talbert JT (1984) Прикладное улучшение лесных деревьев.John Wiley & Sons, Inc., Нью-Йорк

Google Scholar

Влияние отбора и разведения на генетическое разнообразие пихты Дугласовой

Аспит В.Дж., Накамура Р.Р. и Уиллер Н.С. (1989) Дифференциальный репродуктивный успех самцов у пихты Дугласовой. Теор. Прил. Genet. 77 , 681–4.

Google Scholar

Бергманн Ф. и Рютц В.(1991) Генетическая изменчивость и гетерозиготность изоцимов в случайных выборках деревьев и отобранных клонах фруктовых садов из одних и тех же популяций ели европейской. Для. Ecol. Управлять. 46 , 39–47.

Google Scholar

Коричневый A.H.D. (1978) Изоферменты, генетическая структура популяции растений и генетическая консервация. Теор. Прил. Genet. 52 , 145–57.

Google Scholar

Коричневый А.H.D. и Клегг М. (1983) Оценка изоферментов генетических ресурсов растений. In Изоферменты: Актуальные вопросы биологии и медицинских исследований , Vol. II (M.C. Rattazzi, J.G. Scandalios и G.S. Whitt, ред.), Стр. 285–95. Нью-Йорк: Алан Р. Лисс.

Google Scholar

Брюнель Д. и Родольф Ф. (1985) Генетическая структура соседства в популяции Picea abies L. Theor. Прил. Genet. 71 , 101–10.

Google Scholar

Burdon R.D. (1988) Набор для племенных популяций: цели, генетика и реализация. В Proc. 2-го Интер. Конф. по количественной генетике (Б.С. Вейр, Э.Дж. Эйзен, М.М. Гудман и Г. Намкунг, ред.), стр. 555–72. Сандерленд, Массачусетс: Издатели Sinauer Associates Inc.

Google Scholar

Чайсурири К. и Эль-Кассаби Ю.A. (1994) Сравнение генетического разнообразия семенной популяции с естественными популяциями ели ситкинской. Biodiv. Консерв. 3 , 512–23.

Google Scholar

Copes D.L. и Снежко Р.А. (1991) Влияние фенологии цветочных бутонов на потенциальную систему спаривания в саду дугласовой пихты, опыляемом ветром. Банка. J. For. Res. 21 , 813–20.

Google Scholar

Катберт Дж.Р. (1992) Обновление лесов: основа для усиленного управления лесами. В Конференция по лесоводству: управление в Нью-Форест, (К. Бойсверт и Л. Грант, председатель и координатор), стр. 306–11. Онтарио: Лесное хозяйство Канады, Оттава.

Google Scholar

Эль-Кассабы Ю.А. (1991) Генетическая изменчивость внутри и среди популяций хвойных: обзор и оценка методов. В Биохимические маркеры популяционной генетики лесных деревьев (H.Х. Хаттемер, С. Файнески, Ф. Канната и М.Э. Мальволти, ред.), Стр. 59–74. Гаага. SPB Academic Publishing bv.

Google Scholar

Эль-Кассабы Ю.А. и Аскью Г. (1991) Связь между репродуктивной фенологией и продуктивностью при определении профиля гаметического пула в саду из семян пихты Дугласа. Для. Sci. 37 , 827–35.

Google Scholar

Эль-Кассаби Ю.А. и Кук С. (1994) Репродуктивная энергия женщин и репродуктивный успех в саду из семян пихты Дугласа и ее влияние на генетическое разнообразие. Silvae Genet. 43 , 243–6.

Google Scholar

Эль-Кассабы Ю.А. и Дэвидсон Р. (1991) Влияние манипуляций со средой опыления на кажущуюся скорость ауткроссинга в семенном саду дугласско-еловой пихты. Наследственность 66 , 55–9.

Google Scholar

Эль-Кассаби Ю.А. и Намкунг Г. (1994) Влияние практики лесопользования на генетическое разнообразие и его сохранение. В Proc. Международный симпозиум по генетическому сохранению и производству семян деревьев тропических лесов (Р.М. Драйсдейл, С.Э.Т. Джон и А.С. Япа, ред.), Стр. 205–13. Сарабури, Таиланд: Проект центра семян лесных деревьев АСЕАН-КАНАДА, Муак-Лек.

Google Scholar

Эль-Кассабы Ю.А. и Ritland K. (1992) Частотно-зависимый репродуктивный успех самцов при поликроссе Douglas-fir. Теор. Прил. Genet. 83 , 752–8.

Google Scholar

Эль-Кассабы Ю.А. и Ритланд К. (1996). Генетическая изменчивость низкорослой пихты Дугласа в Британской Колумбии и ее значение для сохранения генов. Biodiv. Консерв. 6 , 779–794.

Google Scholar

Эль-Кассабы Ю.А. и Sziklai O. (1982) Генетическая изменчивость аллозима и количественные признаки у отобранной пихты Дугласа [ Pseudotsuga menziesii var. мензиесии (мирб.) Франко] населения. Для. Ecol. Управлять. 4 , 115–26.

Google Scholar

Эль-Кассаби Ю.А., Yeh F.C. и Шиклай О. (1981) Оценка скорости ауткроссинга пихты Дугласовой [ Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco] с использованием аллозимного полиморфизма. Silvae Genet. 30 , 182–4.

Google Scholar

Эль-Кассаби Ю.А., Мигер, доктор медицины, Паркинсон Дж. И Портлок Ф. (1987) Наследование аллозимов, гетерозиготность и частота ауткроссинга среди Pinus monticola около Ladysmith, Британская Колумбия. Наследственность 58 , 173–81.

Google Scholar

Эль-Кассаби Ю.А., Ритланд К., Фашлер А.М.К. и Девитт В.Дж. (1988) Роль репродуктивной фенологии в структуре спаривания семенного сада дугласовой пихты. Silvae Genet. 37 , 76–82.

Google Scholar

Эль-Кассаби Ю.А., Фашлер А.М.К. и Краун М. (1989) Изменения урожайности в семеноводческих садах пихты Дугласа и их влияние на решения по управлению урожаем. Silvae Genet. 38 , 113–21.

Google Scholar

Эль-Кассаби, Ю.А., Баркер, Дж. Э. и Дансворт, Б.Г. (1994) Сохранение лесных генетических ресурсов – перспективы прибрежной промышленности Британской Колумбии.В Семинар по сохранению лесных генетических ресурсов, ноябрь 1993 г. . Торонто: в печати.

Ellstrand N.C. и Marshall D.L. (1985) Влияние одомашнивания на распределение аллозимных вариаций внутри и между сортами редиса, Raphanus sativus L. Theor. Прил. Genet. 69 , 393–8.

Google Scholar

Эриксон В.Дж. и Адамс Т. (1989) Успех спаривания в прибрежном саду семян пихты Дугласа в зависимости от расстояния и фенологии цветов. Банка. J. For. Res. 19 , 1248–55.

Google Scholar

Фрэнсис К.А. (1981) Разработка генотипов растений для систем множественного земледелия. В Селекция растений II (К.Дж. Фрей, редактор), стр. 179–231. Эймс: Издательство государственного университета Айовы.

Google Scholar

Хэмрик Дж. Л., Годт М. Дж. У. и Sherman-Broyles S.L. (1992) Факторы, влияющие на уровни генетического разнообразия древесных растений. Новый для. 6 , 95–124.

Google Scholar

Heaman, J.C. (1985) Программа разведения прибрежной пихты Дугласа ( Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco). В Proc. 18-я кан. Дерево Импров. Доц. Часть I (C.W. Yeatman and T.J.B. Boyle, eds.), Стр. 186–8.

Левин Д.А. (1976) Последствия длительного искусственного отбора, инбридинга и изоляции у Phlox .2. Организация аллозимической изменчивости. Evolution 30 , 463–72.

Google Scholar

Ли П. и Адамс В.Т. (1989) Широкий диапазон вариаций аллозима у пихты Дугласовой ( Pseudotsuga menziesii ). Банка. J. For. Res. 19 , 149–61.

Google Scholar

Маркел С.А. и Адамс В.Т. (1987) Паттерны изменчивости аллозимов внутри и между зонами размножения пихты Дугласа на юго-западе Орегона. Банка. J. For. Res. 17 , 402–7.

Google Scholar

Маршалл Д.Р. и Brown A.H.D. (1975) Оптимальные стратегии отбора проб в генетическом сохранении. In Генетические ресурсы сельскохозяйственных культур сегодня и завтра (О. Х. Франкель и Дж. Г. Хоукс, ред.) Стр. 53–80. Лондон: Издательство Кембриджского университета.

Google Scholar

Миллар К.И. и Маршалл К.A. (1991) Аллозимная вариация кедра Порт-Орфорд ( Chamaecyparis lawsoniana ): значение для генетической консервации. Для. Sci. 37 , 1060–77.

Google Scholar

Моран Г.Ф. и Адамс W.T. (1989) Микрогеографические закономерности дифференциации аллозима у пихты Дугласа из юго-западного Орегона. Для. Sci. 35 , 3–15.

Google Scholar

Моуна О.(1989) Популяционная генетика в улучшении лесных деревьев. In Генетика популяций растений, селекция и генетические ресурсы (А.Х.Д. Браун, М.Т. Клегг, А.Л. Калер и Б.С. Вейр, ред.), Стр. 282–98. Сандерленд, Массачусетс: Издатели Sinauer Associates Inc.

Google Scholar

Müller-Starck G. (1987) Генетическая дифференциация между образцами семян из источников Pinus sylvestris . Silvae Genet. 36 , 232–8.

Google Scholar

Накамура Р.Р. и Уиллер Н.С. (1992) Конкуренция пыльцы и успех родителей в пихте Дугласа. Evolution 46 , 846–51.

Google Scholar

Намкунг Г. (1994) Генетическое разнообразие для лесной политики и управления. В Семинар «Измерение биоразнообразия для лесной политики и управления». Февраль, 1994 , Ванкувер: в печати.

Нил Д. Б. и Адамс В.Т. (1985) Система спаривания в естественных и лесных насаждениях пихты Дугласа. Теор. Прил. Genet. 71 , 201–7.

Google Scholar

Nei M. (1973) Анализ генетического разнообразия в разделенных популяциях. Proc. Natl. Акад. Sci. США 70 . 3321–3.

Google Scholar

Ней М.и Ройчоудхури А.К. (1974) Вариации выборки гетерозиготности и генетической дистанции. Генетика , 76 , 379–90.

Google Scholar

Рейнольдс С. и Эль-Кассаби Ю.А. (1990) Родительский баланс в саду семян пихты Дугласа: шишка и производство семян. Silvae Genet. 39 , 40–2.

Google Scholar

Ритланд К.и Эль-Кассаби Ю.А. (1985) Природа инбридинга в семенном саду пихты Дугласа, показанная с помощью эффективной мультилокусной модели. Теор. Прил. Genet. 71 , 375–84.

Google Scholar

Робердс Дж. Х., Фридман С. Т. и Эль-Кассаби Ю.А. (1991) Эффективное количество родителей пыльцы в клональных семенных садах. Теор. Прил. Genet. 82 , 313–20.

Google Scholar

Саволайнен О.и Карккайнен К. (1992) Влияние управления лесами на генофонд. Новый для. 6 . 329–45.

Google Scholar

Саволайнен О. и Яздани Р. (1991) Генетическое сравнение естественных и искусственных популяций Pinus sylvestris . In Генетическая изменчивость европейских популяций лесных деревьев (Г. Мюллер-Старк и М. Цихе, ред.) Стр. 228–34. Франкфурт-на-Майне: Verlag Sauerländer.

Google Scholar

Шоу Д.В. и Allard R.W. (1982) Оценка скорости ауткроссинга у пихты Дугласа с использованием изоферментных маркеров. Теор. Прил. Genet. 62 , 113–20.

Google Scholar

Райт С. (1965) Интерпретация структуры популяции в статистике F с особым вниманием к системам спаривания. Evolution 19 , 395–420.

Google Scholar

Yeh F.C. и О’Мэлли Д. (1980) Изменчивость ферментов в природных популяциях пихты Дугласовой, Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco, из Британской Колумбии. I. Паттерны генетической изменчивости в прибрежных популяциях. Silvae Genet. 29 , 83–92.

Google Scholar

Yeh F.C. и Морган К. (1987) Система спаривания и мультилокусные ассоциации в естественной популяции Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Франко. Теор. Прил. Genet. 73 , 799–808.

Google Scholar

Селекция прививочных подвоев пихты дугласовой (Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco).

Лесная служба США
Уход за землей и обслуживание людей

Министерство сельского хозяйства США

Селекция прививочных подвоев пихты дугласовой ( Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Франко).
Автор (ы): D.L. Копы
Дата: 1999
Источник: Silvae Genetica. 48 (3-4): 188-193
Серия публикаций: Научный журнал (JRNL)
PDF: Скачать публикацию (253 КБ)
Описание В течение 24 лет было проведено исследование, чтобы определить, может ли селекционная программа произвести хорошо совместимые с прививками подвои. Двадцать семь деревьев с очевидной высокой совместимостью прививок были отобраны и скрещены с получением 226 семейств с контрольным опылением.Сеянцы выращивали, высаживали в поле и прививали опытные побеги. Союзы трансплантатов из полевых испытаний были оценены анатомически на предмет внутренних симптомов несовместимости. Средняя совместимость потомства от 226 скрещиваний составила 90,6% по сравнению с 65% в местных популяциях. Значения разведения были рассчитаны для каждого родителя с помощью наилучшей процедуры линейного прогнозирования. Средняя совместимость, полученная в результате скрещивания между 10 ведущими родителями, была оценена по племенной ценности как 95,4%. Результаты полевых испытаний потомства от 34 скрещиваний среди 10 наиболее совместимых родителей показали 96% совместимость.В дополнение к полевым испытаниям на совместимость прививок, саженцы саженцев от 124 скрещиваний оценивали на наличие второго года вегетативного покрова почек и высоту саженцев. При сохранении достаточно высокого уровня совместимости прививок можно было разводить как на устойчивость к повреждению весенними заморозками, так и на увеличенную высоту рассады.
Примечания к публикации
- Посетите страницу запроса публикации PNW, чтобы запросить печатную копию этой публикации.
- Мы рекомендуем вам также распечатать эту страницу и прикрепить ее к распечатке статьи, чтобы сохранить полную информацию о цитировании.
- Эта статья была написана и подготовлена государственными служащими США в официальное время и поэтому находится в открытом доступе.
Citation Copes, D.L. 1999. Селекция прививочных подвоев пихты дугласовой ( Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco). Silvae Genetica. 48 (3-4): 188-193
Связанный поиск
XML: Просмотр XML

Показать меньше

https: // www.fs.usda.gov/treesearch/pubs/2844

Вопросы и ответы: современное растениеводство для обеспечения продовольственной безопасности будущего | BMC Biology

Начало развития сельскохозяйственных культур уходит корнями в далекую историю человечества и, по общему мнению, берет свое начало в «Плодородном полумесяце», регионе, который сегодня охватывает часть стран Ирака, Палестины, Сирии, Ливана, Кипра, Иордания, Израиль, Египет, Турция и Иран. Недавно появились новые свидетельства того, что доисторические хлебные продукты производились в Юго-Западной Азии 14 400 лет назад [1], которые были сделаны из корневых клубней ( Bolboschoenus glaucus ) и семян дикого эйнкорна ( Triticum boeoticum ), 1 предков сегодняшней пшеницы.Интересно, что это отодвигает свидетельства существования хлеба по крайней мере за 4000 лет до появления сельского хозяйства. Это говорит о том, что ранняя культура хлебопечения могла способствовать одомашниванию наших первых культур [1]. Во время заселения и появления сельского хозяйства люди выбирали наиболее подходящие растения из имеющихся предков, и этот процесс совместной эволюции между видами растений и человечеством привел к появлению современных продовольственных культур. Семена наиболее эффективных растений были сохранены после сбора урожая и посеяны в следующем сезоне, что привело к постоянному улучшению характеристик, благоприятных для питания человека и местного производства.Эта первая форма селекции без какого-либо принудительного скрещивания представляла собой основную форму улучшения растений в течение нескольких тысяч лет, изменяя характеристики растений, чтобы повысить их полезность [2]. Так называемые черты одомашнивания были предпосылкой успешного выращивания. Хорошим примером было устранение механизма распространения семян в зерновых, таких как пшеница и ячмень, известного как рассыпание семян. В то время как растрескивание семян при созревании важно для распространения и воспроизводства диких трав, эта характеристика нежелательна для земледелия.Таким образом, в процессе одомашнивания были отобраны генотипы растений, которые сохранили свои семена и тем самым продемонстрировали снижение потерь урожая. Поскольку только несколько растений несли желаемые мутации, сильное давление отбора стало генетическим узким местом для разнообразия, доступного в наших современных культурах (рис. 1a). Учитывая чрезвычайно долгую эволюцию сельскохозяйственных культур, современная селекция растений начала практиковаться лишь недавно, в основном после формулировки законов наследственности Менделя в 1865 году. Ранние генетические исследования гороха Менделем и его результирующие теории о наследовании и сегрегации признаков проложили путь к целевому скрещиванию. между родительскими генотипами – практика, лежащая в основе современного улучшения сельскохозяйственных культур.Однако, чтобы удовлетворить растущий спрос на продукты растительного происхождения, к середине этого столетия необходимо удвоить темпы генетического улучшения.

Рис. 1.

Развитие сельскохозяйственных культур с течением времени, включая a потерю разнообразия из-за генетических узких мест приручения, отбора местных сортов и современной селекции растений (адаптировано из [10], с разрешения AAAS), и b пример староместного сорта высокорослой пшеницы, выращенного до Зеленой революции ( слева, ), и современного высокоурожайного сорта, выбранного для уменьшения высоты растений ( справа, )

Геномика, генетика и селекция аквакультуры в США: текущее состояние, проблемы и приоритеты будущих исследований | BMC Genomics

Алкивар-Уоррен А., Данхэм Р., Гаффни П. Первый семинар по картированию генома видов в аквакультуре. Anim Genet. 1997. 28 (6): 451–2.

Артикул Google Scholar

Tsai HY, Hamilton A, Tinch AE, Guy DR, Bron JE, Taggart JB, Gharbi K, Stear M, Matika O, Pong-Wong R. Геномное прогнозирование устойчивости хозяина к морским вшам у выращиваемого атлантического лосося населения. Genet Sel Evol. 2016; 48: 47.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

Vallejo RL, Leeds TD, Fragomeni BO, Gao G, Hernandez AG, Misztal I, Welch TJ, Wiens GD, Palti Y. Оценка генетической селекции на устойчивость к бактериальным болезням холодной воды с использованием данных по продуктивности потомства радужной форели: Insights on методы генотипирования и модели геномного прогнозирования. Фронт Жене. 2016; 7: 96.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

Vallejo RL, Leeds TD, Gao G, Parsons JE, Martin KE, Evenhuis JP, Fragomeni BO, Wiens GD, Palti Y.Модели геномной селекции вдвое превышают точность прогнозируемых селекционных значений устойчивости к бактериальным болезням холодной воды по сравнению с традиционной родословной моделью в аквакультуре радужной форели. Genet Select Evol. 2017; 49 (1): 17.

Лю З., Лю С., Яо Дж., Бао Л., Чжан Дж., Ли Ю., Цзян Ц., Сунь Л., Чжан Ю., Чжоу Т. и др. Последовательность генома канального сома дает представление об эволюции образования чешуек у костистых рыб. Nat Commun. 2016; 7: 11757.

Лиен С., Куп Б.Ф., Сандве С.Р., Миллер Дж. Р., Кент М. П., Ном Т., Хвидстен Т. Р., Леонг Дж. С., Минкли Д. Р., Зимин А. и др.Геном атлантического лосося дает представление о редиплоидизации. Природа. 2016; 533 (7602): 200–5.

CAS PubMed Статья Google Scholar

Berthelot C, Brunet F, Chalopin D, Juanchich A, Bernard M, Noël B, Bento P, Da Silva C, Labadie K, Alberti A. Геном радужной форели позволяет по-новому взглянуть на эволюцию после полного генома дупликация у позвоночных. Nat Commun. 2014; 5: 3657.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

Brawand D, Wagner CE, Li YI, Malinsky M, Keller I, Fan S, Simakov O, Ng AY, Lim ZW, Bezault E, et al. Геномный субстрат для адаптивной радиации африканских цихлид. Природа. 2014. 513 (7518): 375–81.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

Zhang G, Fang X, Guo X, Li L, Luo R, Xu F, Yang P, Zhang L, Wang X, Qi H и др. Геном устриц выявляет стрессовую адаптацию и сложность формирования раковины.Природа. 2012. 490 (7418): 49–54.

CAS PubMed Статья Google Scholar

10.

Zhang L, Guo X. Разработка и проверка маркеров однонуклеотидного полиморфизма восточной устрицы Crassostrea virginica Gmelin путем добычи EST и повторного секвенирования. Аквакультура. 2010. 302 (1): 124–9.

CAS Статья Google Scholar

11.

Го Х, Ван И, Сюй З, Ян Х.Манипуляции с хромосомными наборами у моллюсков, Новые технологии в аквакультуре: повышение эффективности производства, качества и экологического менеджмента. 2009. с. 165–94.

Google Scholar

12.

Эйерман Л.Е., Заяц М.П. Транскриптомный анализ осморегуляторных генов-кандидатов у восточной устрицы Crassostrea virginica . BMC Genomics. 2014; 15 (1): 1.

Артикул CAS Google Scholar

13.

Zeng Q, Fu Q, Li Y, Liu S, Waldbieser G, Yang Y, Bao L, Yuan Z, Li N, Liu Z. Разработка массивов SNP из 690 тыс. Для картирования всего генома и генетических исследований сома. Научный отчет 2017; 7: 40347.

14.

Hedgecock D, Shin G, Gracey AY, Den Berg DV, Samanta MP. Карты сцепления второго поколения для Pacific Oyster Crassostrea gigas Выявление ошибок в сборке каркасов генома. G3: Гены / Геномы / Генетика. 2015; 5 (10): 2007–19.

Артикул Google Scholar

15.

Gomez-Chiarri M, Warren WC, Guo X, Proestou D. Разработка инструментов для изучения иммунитета моллюсков: секвенирование генома восточной устрицы, Crassostrea virginica . Fish Shellfish Immunol. 2015; 46 (1): 2–4.

CAS PubMed Статья Google Scholar

16.

Zhang X, Zhang Y, Scheuring C, Zhang HB, Huan P, Wang B, Liu C, Li F, Liu B, Xiang J. Создание и характеристика библиотеки бактериальных искусственных хромосом (BAC) Тихоокеанского региона белая креветка, Litopenaeus vannamei .Mar Biotechnol. 2010; 12 (2): 141–9.

CAS PubMed Статья Google Scholar

17.

Лю З., Кордес Дж. Технологии маркеров ДНК и их применение в генетике аквакультуры. Аквакультура. 2004. 238 (1): 1–37.

CAS Статья Google Scholar

18.

Sun L, Liu S, Wang R, Jiang Y, Zhang Y, Zhang J, Bao L, Kaltenboeck L, Dunham R, Waldbieser G. Идентификация и анализ общегеномных SNP дают представление о сигнатурах отбора и одомашнивание канального сома ( Ictalurus punctatus ).PLoS One. 2014; 9 (10): e109666.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

19.

Янез Дж. М., Насва С., Лопес М. Е., Бассини Л., Корреа К., Гилби Дж., Бернатчез Л., Норрис А., Нейра Р., Лоренте Дж. П. и др. Обнаружение полногеномного однонуклеотидного полиморфизма атлантического лосося ( Salmo salar ): проверка в дикой и выращиваемой американской и европейской популяциях. Мол Экол Ресур. 2016; 16 (4): 1002–11.

CAS PubMed Статья Google Scholar

20.

Gidskehaug L, Kent M, Hayes BJ, Lien S. Вызов генотипа и картирование мультисайтовых вариантов с использованием массива SNP iSelect для атлантического лосося. Биоинформатика (Оксфорд, Англия). 2011; 27 (3): 303–10.

CAS Статья Google Scholar

21.

Houston RD, Taggart JB, Cézard T., Bekaert M, Lowe NR, Downing A, Talbot R, Bishop SC, Archibald AL, Bron JE. Разработка и валидация массива генотипов с высокой плотностью SNP для атлантического лосося ( Salmo salar ).BMC Genomics. 2014; 15: 90.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

22.

Liu S, Sun L, Li Y, Sun F, Jiang Y, Zhang Y, Zhang J, Feng J, Kaltenboeck L, Kucuktas H. Разработка массива SNP 250 K сома для исследований ассоциации в целом . BMC Res Notes. 2014; 7: 135.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

23.

Palti Y, Gao G, Liu S, Kent M, Lien S, Miller M, Rexroad C, Moen T. Разработка и характеристика массива однонуклеотидных полиморфизмов 57 K для радужной форели. Мол Экол Ресур. 2015; 15 (3): 662–72.

CAS PubMed Статья Google Scholar

24.

Xu J, Zhao Z, Zhang X, Zheng X, Li J, Jiang Y, Kuang Y, Zhang Y, Feng J, Li C и др. Разработка и оценка первого массива SNP с высокой пропускной способностью для карпа обыкновенного ( Cyprinus carpio ).BMC Genomics. 2014; 15: 307.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

25.

Wang J, Li L, Zhang G. Карта генетического сцепления SNP с высокой плотностью и анализ QTL признаков, связанных с ростом в гибридном семействе устриц ( Crassostrea gigas × Crassostrea angulata ) Использование генотипирования -последовательность. G3: Гены / Геномы / Генетика. 2016; 6 (5): 1417–26.

Артикул Google Scholar

26.

Гонсалес-Пена Д., Гао Дж., Барански М., Моэн Т., Кливленд Б.М., Кенни П.Б., Вальехо Р.Л., Палти Ю., Лидс Т.Д. Полногеномное исследование ассоциации для выявления локусов, влияющих на показатели выхода филе, туши и массы тела у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Фронт Жене. 2016; 7: 203.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

27.

Ng SHS, Artieri CG, Bosdet IE, Chiu R, Danzmann RG, Davidson WS, Ferguson MM, Fjell CD, Hoyheim B., Jones SJM, et al.Физическая карта генома атлантического лосося. Salmo Salar Genomics. 2005. 86 (4): 396–404.

CAS PubMed Статья Google Scholar

28.

Катагири Т., Кидд К., Томасино Е., Дэвис Дж. Т., Вишон С., Стерн Дж. Э., Карлтон К. Л., Хоу А. Е., Кочер Т. Д.. Основанная на ВАС физическая карта генома нильской тилапии. BMC Genomics. 2005; 6: 89.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

29.

Quiniou SM, Waldbieser GC, Duke MV. Физическая карта генома канального сома на основе ВАС первого поколения. BMC Genomics. 2007; 8:40.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

30.

Xu P, Wang S, Liu L, Thorsen J, Kucuktas H, Liu Z. Физическая карта генома канального сома на основе ВАС. Геномика. 2007. 90 (3): 380–8.

CAS PubMed Статья Google Scholar

31.

Palti Y, Luo M-C, Hu Y, Genet C, You FM, Vallejo RL, Thorgaard GH, Wheeler PA, Rexroad CE. Физическая карта генома радужной форели первого поколения на основе ВАС. BMC Genomics. 2009; 10: 462.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

32.

Xu P, Wang J, Wang J, Cui R, Li Y, Zhao Z, Ji P, Zhang Y, Li J, Sun X. Создание первой физической карты общего генома карпа на основе BAC. . BMC Genomics.2011; 12: 537.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

33.

Xia JH, Feng F, Lin G, Wang CM, Yue GH. Физическая карта азиатского морского окуня первого поколения на основе ВАС ( Lates calcarifer ). PLoS One. 2010; 5 (8): e11974.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

34.

Гаффни П.М. Основанная на BAC физическая карта генома тихоокеанской устрицы.J Shellfish Res. 2008; 27 (4): 1009.

Google Scholar

35.

Zhang X, Zhao C, Huang C, Duan H, Huan P, Liu C, Zhang X, Zhang Y, Li F, Zhang H-B и др. Основанная на ВАС физическая карта морского гребешка Чжиконг ( Chlamys farreri, Jones et Preston). PLoS One. 2011; 6 (11): e27612.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

36.

Schwartz D, Li X, Hernandez L, Ramnarain S, Huff E, Wang Y.Упорядоченные рестрикционные карты хромосом Saccharomyces cerevisiae , построенные с помощью оптического картирования. Наука. 1993. 262 (5130): 110–4.

CAS PubMed Статья Google Scholar

37.

Rajendran K, Zhang J, Liu S, Peatman E, Kucuktas H, Wang X, Liu H, Wood T, Terhune J, Liu Z. Рецепторы распознавания патогенов у канального сома: II. Идентификация, филогения и экспрессия рецепторов (RLR), индуцируемых ретиноевой кислотой гена I (RIG-I).Dev Comp Immunol. 2012; 37 (3): 381–9.

CAS PubMed Статья Google Scholar

38.

Wang R, Sun L, Bao L, Zhang J, Jiang Y, Yao J, Song L, Feng J, Liu S, Liu Z. Bulk segregant RNA-seq выявляет экспрессию и позиционные гены-кандидаты и аллель- специфическое выражение устойчивости к заболеванию кишечной сепсисом сома. BMC Genomics. 2013; 14: 929.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

39.

Sun F, Peatman E, Li C, Liu S, Jiang Y, Zhou Z, Liu Z. Транскриптомные сигнатуры прикрепления, подавление NF-κB и стимуляция IFN в жабрах сома после бактериальной инфекции столбчатой формы. Dev Comp Immunol. 2012. 38 (1): 169–80.

CAS PubMed Статья Google Scholar

40.

Liu S, Wang X, Sun F, Zhang J, Feng J, Liu H, Rajendran K, Sun L, Zhang Y, Jiang Y. RNA-Seq выявляет сигнатуры экспрессии генов, участвующих в транспорте кислорода, белка синтез, складывание и деградация в ответ на тепловой стресс у сома.Physiol Genomics. 2013. 45 (12): 462–76.

CAS PubMed Статья Google Scholar

41.

Валенсуэла-Миранда Д., Болтана С., Кабрехос М.Э., Янез Дж. М., Галлардо-Эскарате С. Высокопроизводительный транскриптомный анализ ISAV-инфицированного атлантического лосося Salmo salar раскрывает расходящиеся иммунные ответы, связанные с головными и почками. ткани печени и жабр. Fish Shellfish Immunol. 2015; 45 (2): 367–77.

CAS PubMed Статья Google Scholar

42.

Xu C, Evensen Ø, Munang’andu HM. Сборка de novo и анализ транскриптома макрофагов / дендритоподобных TO-клеток атлантического лосося после обработки IFN типа I и инфицирования альфавирусом подтипа-3 лосося. BMC Genomics. 2015; 16: 96.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

43.

Салем М., Вальехо Р.Л., Лидс Т.Д., Палти Й., Лю С., Саббаг А, Рексроад III CE, Яо Дж. RNA-Seq определяет маркеры SNP для признаков роста радужной форели.PLoS One. 2012; 7 (5): e36264.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

44.

Narum SR, Campbell NR. Транскриптомный ответ на тепловой стресс среди экологически разнородных популяций краснополосой форели. BMC Genomics. 2015; 16: 103.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

45.

Кано И., Вернер-Джеффрис Д.В., ван Аэрле Р., Пейли Р.К., Пилер Е.Дж., Грин М., Риммер Г.С., Сэвидж Дж., Столяр К.Л., Бейли А.Е.Отечность кожи – это новое передаваемое заболевание у радужной форели Oncorhynchus mykiss Walbaum. PLoS One. 2016; 11 (7): e0158151.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

46.

Marancik D, Gao G, Paneru B, Ma H, Hernandez AG, Salem M, Yao J, Palti Y, Wiens GD. Транскриптом всего тела селективно выведенной радужной форели устойчивой, контрольной и восприимчивой линий после экспериментального заражения Flavobacterium Psyrophilum .Фронт Жене. 2015; 5: 453.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

47.

Чепмен Р.В., Ридинг Б.Дж., Салливан К.В. Профилирование транскриптома яичников с помощью искусственного интеллекта выявило транскриптомный отпечаток пальца, позволяющий прогнозировать качество яиц у полосатого окуня, Morone saxatilis . PloS One. 2014; 9 (5): e96818.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

48.

Ридинг Б.Дж., Чепмен Р.В., Шафф Дж. Э., Шолль Е. Х., Опперман СН, Салливан CV. Транскриптом яичников для всех стадий созревания полосатого окуня ( Morone saxatilis ), высокоразвитой окуневой рыбы. BMC Res Notes. 2012; 5: 111.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

49.

Салливан К.В., Чепмен Р.В., Ридинг Б.Дж., Андерсон ЧП. Транскриптомика мРНК и качества яиц у выращиваемой рыбы: некоторые недавние разработки и направления на будущее.Gen Comp Endocrinol. 2015; 221: 23–30.

CAS PubMed Статья Google Scholar

50.

Чжао Ю., Ван Дж., Тхаммарацунторн Дж., Ву Дж., Вэй Дж., Ван И, Сюй Дж., Чжао Дж. Сравнительный анализ транскриптома нильской тилапии ( Oreochromis niloticus ) в ответ на щелочной стресс. Genet Mol Res. 2015; 14 (4): 17916–26.

CAS PubMed Статья Google Scholar

51.

Xu Z, Gan L, Li T, Xu C, Chen K, Wang X, Qin JG, Chen L, Li E. Профилирование транскриптомов и анализ молекулярных путей генов в связи с адаптацией к засолению у нильской тилапии Oreochromis niloticus . PLoS One. 2015; 10 (8): e0136506.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

52.

Хе А.Ю., Нин Л.Дж., Чен Л.К., Чен Ю.Л., Син Цюй, Ли Дж.М., Цяо Ф, Ли Д.Л., Чжан М.Л., Ду Цзы. Системная адаптация липидного обмена в ответ на диету с низким и высоким содержанием жиров у нильской тилапии ( Oreochromis niloticus ).Physiol Rep.2015; 3 (8): e12485.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

53.

Clark MS, Thorne MA, Amaral A, Vieira F, Batista FM, Reis J, Power DM. Определение молекулярных и физиологических реакций на хронические экологические проблемы у инвазивных видов: тихоокеанских устриц, Crassostrea gigas . Ecol Evol. 2013; 3 (10): 3283–97.

PubMed PubMed Central Google Scholar

54.

Zhao X, Yu H, Kong L, Liu S, Li Q. Сравнительный анализ транскриптома двух устриц, Crassostrea gigas и Crassostrea hongkongensis , дает представление об адаптации к гипоосмотическим условиям. PLoS один. 2014; 9 (11): e111915.

55.

Чжао X, Ю Х, Конг Л., Ли К. Транскриптомные реакции на стресс солености у тихоокеанских устриц Crassostrea gigas . PLoS One. 2012; 7 (9): e46244.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

56.

McDowell IC, Modak TH, Lane CE, Gomez-Chiarri M. Кластеризация множественного сходства белков выявляет новые расширенные семейства иммунных генов у восточной устрицы Crassostrea virginica. Fish Shellfish Immunol. 2016; 53: 13–23.

CAS PubMed Статья Google Scholar

57.

Zhang L, Li L, Zhu Y, Zhang G, Guo X. Анализ транскриптома показывает богатый набор генов, связанных с врожденным иммунитетом у восточных устриц ( Crassostrea virginica ).Mar Biotechnol. 2014. 16 (1): 17–33.

PubMed Статья CAS Google Scholar

58.

Wei J, Zhang X, Yu Y, Huang H, Li F, Xiang J. Сравнительная транскриптомная характеристика раннего развития тихоокеанских белых креветок Litopenaeus vannamei . PLoS One. 2014; 9 (9): e106201.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

59.

Sookruksawong S, Sun F, Liu Z, Tassanakajon A. Анализ RNA-Seq выявляет гены, связанные с устойчивостью к вирусу синдрома Таура (TSV) у тихоокеанских белых креветок Litopenaeus vannamei . Dev Comp Immunol. 2013. 41 (4): 523–33.

CAS PubMed Статья Google Scholar

60.

Ghaffari N, Sanchez-Flores A, Doan R, Garcia-Orozco KD, Chen PL, Ochoa-Leyva A, Lopez-Zavala AA, Carrasco JS, Hong C, Brieba LG.Новая сборка транскриптомов и улучшенная аннотация белоногой креветки ( Litopenaeus vannamei ), доминирующего ракообразного в мировой марикультуре морепродуктов. Научный отчет 2014; 4: 7081.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

61.

Ридинг Б.Дж., Уильямс В.Н., Чепмен Р.В., Уильямс Т.И., Салливан К.В. Динамика протеома яичника полосатого окуня ( Morone saxatilis ) выявляет сложную сеть трансласом.J Proteome Res. 2013; 12 (4): 1691–9.

CAS PubMed Статья Google Scholar

62.

Шиллинг Дж., Непомуцено А., Шафф Дж. Э., Муддиман, округ Колумбия, Дэниэлс Х. В., Ридинг Б. Дж.. Компартментный протеомный анализ яичников белого окуня ( Morone americana ) с использованием машин опорных векторов. J Proteome Res. 2014. 13 (3): 1515–26.

CAS PubMed Статья Google Scholar

63.

Schilling J, Loziuk PL, Muddiman DC, Daniels HV, Reading BJ. Механизмы образования яичного желтка и их влияние на ранний период жизни белого окуня ( Morone americana ). PLoS One. 2015; 10 (11): e0143225.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

64.

Уильямс В.Н., Ридинг Б.Дж., Амано Х., Хирамацу Н., Шиллинг Дж., Зальгер С.А., Ислам Уильямс Т., Гросс К., Салливан К.В. Пропорциональное накопление белков желтка, происходящих из нескольких вителлогенинов, точно регулируется во время вителлогенеза у полосатого окуня ( Morone saxatilis ).J Exp Zool A Ecol Genet Physiol. 2014; 321 (6): 301–15.

CAS PubMed Статья Google Scholar

65.

Салем М., Кенни П.Б., Rexroad CE, Яо Дж. Протеомная подпись атрофии мышц у радужной форели. J Proteome. 2010. 73 (4): 778–89.

CAS Статья Google Scholar

66.

Mennigen JA, Panserat S, Larquier M, Plagnes-Juan E, Medale F, Seiliez I, Skiba-Cassy S.Постпрандиальная регуляция печеночных микроРНК, по прогнозам, воздействует на путь инсулина у радужной форели. PLoS One. 2012; 7 (6): e38604.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

67.

Менниген Дж. А., Скиба-Касси С., Пансерат С. Онтогенетическая экспрессия метаболических генов и микроРНК у оленей радужной форели во время перехода от эндогенного к экзогенному периоду питания. J Exp Biol. 2013. 216 (9): 1597–608.

CAS PubMed Статья Google Scholar

68.

Juanchich A, Bardou P, Rue O, Gabillard JC, Gaspin C, Bobe J, Guiguen Y. Характеристика обширного транскриптома miRNA радужной форели с помощью секвенирования следующего поколения. BMC Genomics. 2016; 17: 164.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

69.

Mennigen JA, Zhang D.MicroTrout: комплексная структура для прогнозирования мишеней miRNA на уровне всего генома для радужной форели, Oncorhynchus mykiss . Comp Biochem Physiol Part D Геномика Протеомика. 2016; 20: 19–26.

CAS PubMed Статья Google Scholar

70.

Аль-Тобасей Р., Панеру Б., Салем М. Общегеномное открытие длинных некодирующих РНК у радужной форели. PLoS One. 2016; 11 (2): e0148940.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

71.

Wang Z, Schwacke R, Kunze R. Транскрипция мобильных элементов и длинных некодирующих РНК, индуцированная повреждением ДНК, у Arabidopsis встречается редко и зависит от ATM. Завод Мол. 2016; 9 (8): 1142–55.

CAS PubMed Статья Google Scholar

72.

Фарлора Р., Валенсуэла-Миранда Д., Аларкон-Матус П., Галлардо-Эскарат С. Идентификация микроРНК, связанных с половым созреванием, в мозге и семенниках радужной форели посредством глубокого секвенирования малых РНК.Mol Reprod Dev. 2015; 82 (9): 651–62.

CAS PubMed Статья Google Scholar

73.

Ma H, Weber GM, Hostuttler MA, Wei H, Wang L, Yao J. Профили экспрессии микроРНК из яиц различного качества, связанных с постовуляторным старением радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). BMC Genomics. 2015; 16: 201.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

74.

Панеру Б., Аль-Тобасей Р., Лидс Т., Кенни Б., Салем М.: МикроРНК, связанные с ростом мышц и качеством филе радужной форели. В: PAG-XXV Конференция по геномам растений и животных: Геном растений и животных. Сан Диего; 2017.

75.

Панеру Б., Аль-Тобасей Р., Палти И., Винс Г. Д., Салем М. Дифференциальная экспрессия длинных некодирующих РНК в трех генетических линиях радужной форели в ответ на заражение Flavobacterium Psyrophilum . Sci Rep. 2016; 6 (36032): 1–14.

Google Scholar

76.

Bekaert M, Lowe NR, Bishop SC, Bron JE, Taggart JB, Houston RD. Секвенирование и характеристика обширного атлантического лосося ( Salmo salar L.) Репертуар микроРНК. PLoS One. 2013; 8 (7): e70136.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

77.

Андреассен Р., Уоррен М.М., Хойхейм Б. Открытие и характеристика генов miRNA у атлантического лосося ( Salmo salar ) с использованием подхода глубокого секвенирования.BMC Genomics. 2013; 14: 482.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

78.

Kure EH, Saebo M, Stangeland AM, Hamfjord J, Hytterod S, Heggenes J, Lydersen E. Молекулярные реакции на токсикологические стрессоры: профилирование микроРНК у дикого атлантического лосося ( Salmo salar ), подвергнутого воздействию кислого алюминия- богатая вода. Aquat Toxicol. 2013; 138–139: 98–104.

PubMed Статья CAS Google Scholar

79.

Барозай М.Ю., Белудж И.А., Дин М. Идентификация микроРНК и их мишеней в Helianthus. Mol Biol Rep. 2012; 39 (3): 2523–32.

CAS PubMed Статья Google Scholar

80.

Xu Z, Qin Q, Ge J, Pan J, Xu X. Биоинформатическая идентификация и проверка консервативных микроРНК в Ictalurus punctatus . Mol Biol Rep. 2012; 39 (12): 10395–405.

CAS PubMed Статья Google Scholar

81.

Xu Z, Chen J, Li X, Ge J, Pan J, Xu X. Идентификация и характеристика микроРНК у канального сома ( Ictalurus punctatus ) с помощью технологии секвенирования Solexa. PLoS One. 2013; 8 (1): e54174.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

82.

Tao W, Sun L, Shi H, Cheng Y, Jiang D, Fu B, Conte MA, Gammerdinger WJ, Kocher TD, Wang D. Комплексный анализ профилей экспрессии miRNA и mRNA в гонадах тилапии на ранней стадии стадия половой дифференциации.BMC Genomics. 2016; 17: 328.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

83.

Xu F, Wang X, Feng Y, Huang W, Wang W, Li L, Fang X, Que H, Zhang G. Идентификация консервативных и новых микроРНК в тихоокеанской устрице Crassostrea gigas с помощью глубокого секвенирования . PLoS One. 2014; 9 (8): e104371.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

84.

Zhou Z, Wang L, Song L, Liu R, Zhang H, Huang M, Chen H. Идентификация и характеристики иммунных микроРНК в гемоцитах устрицы Crassostrea gigas . PLoS One. 2014; 9 (2): e88397.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

85.

Zeng D, Chen X, Xie D, Zhao Y, Yang Q, Wang H, Li Y, Chen X. Идентификация высокоэкспрессированных микроРНК хозяина, которые реагируют на вирусную инфекцию синдрома белого пятна у тихоокеанских белых креветок Litopenaeus vannamei (Penaeidae).Genet Mol Res. 2015; 14 (2): 4818–28.

CAS PubMed Статья Google Scholar

86.

Си Q, Xiong Y, Wang Y, Cheng X, Qi Q, Shu G, Wang S, Wang L, Gao P, Zhu X и др. Общегеномное открытие новых и консервативных микроРНК у белых креветок ( Litopenaeus vannamei ). Mol Biol Rep. 2015; 42 (1): 61–9.

CAS PubMed Статья Google Scholar

87.

Андерссон Л., Арчибальд А.Л., Боттема С.Д., Браунинг Р., Берджесс С.К., Берт Д.В., Касас Э., Ченг Х.Х., Кларк Л., Кулдри С. и др. Скоординированные международные действия по ускорению перехода от генома к феномену с FAANG, проектом «Функциональная аннотация геномов животных». Genome Biol. 2015; 16:57.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

88.

Fellous A, Favrel P, Guo X, Riviere G. Семейство генов Jumonji в Crassostrea gigas предполагает эволюционную консервацию ортологов гистоновых деметилаз Jmj-C в гаметогенезе и развитии устриц.Ген. 2014; 538 (1): 164–75.

CAS PubMed Статья Google Scholar

89.

Fellous A, Favrel P, Riviere G. Температура влияет на метилирование гистонов и экспрессию мРНК ортологов гистон-деметилазы Jmj-C во время раннего развития устрицы Crassostrea gigas . Mar Genomics. 2015; 19: 23–30.

PubMed Статья Google Scholar

90.

Riviere G. Эпигенетические особенности устрицы Crassostrea gigas , указывающие на функционально релевантное метилирование промоторной ДНК у беспозвоночных. Front Physiol. 2014; 5 (129): 1–7.

Google Scholar

91.

Olson CE, Roberts SB. Полногеномное профилирование метилирования ДНК и экспрессии генов в Crassostrea gigas мужских гамет. Front Physiol. 2014; 5: 224.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

92.

Wang X, Li Q, Lian J, Li L, Jin L, Cai H, Xu F, Qi H, Zhang L, Wu F. Полногеномные и одноосновные ДНК-метиломы тихоокеанской устрицы Crassostrea gigas обеспечивают понимание эволюции метилирования CpG беспозвоночных. BMC Genomics. 2014; 15: 1119.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

93.

Saint-Carlier E, Riviere G. Регулирование ортологов Hox у устриц Crassostrea gigas свидетельствует о функциональной роли метилирования промоторной ДНК у беспозвоночных.FEBS Lett. 2015. 589 (13): 1459–66.

CAS PubMed Статья Google Scholar

94.

Моран П., Перес-Фигероа А. Изменения метилирования, связанные с ранними стадиями созревания атлантического лосося. BMC Genet. 2011; 12: 86.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

95.

Baerwald MR, Meek MH, Stephens MR, Nagarajan RP, Goodbla AM, Tomalty KMH, Thorgaard GH, May B, Nichols KM.Фенотипическая дивергенция, связанная с миграцией, связана с эпигенетическими модификациями радужной форели. Mol Ecol. 2016; 25 (8): 1785–800.

CAS PubMed Статья Google Scholar

96.

Marandel L, Lepais O, Arbenoits E, Véron V, Dias K, Zion M, Panserat S. Реконструкция эпигенетического ландшафта печени радужной форели с непереносимостью глюкозы ( Oncorhynchus mykiss ) по статусу питания и диете углеводы.Научный доклад 2016; 6: 32187.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

97.

Kratochwil CF, Meyer A. Картирование активных промоторов с помощью ChIP-seq профилирования h4K4me3 у цихлидных рыб – первый шаг к раскрытию цис-регуляторных элементов в экологической модели костистых рыб. Мол Экол Ресур. 2015; 15 (4): 761–71.

CAS PubMed Статья Google Scholar

98.

Хьюстон Р. Д., Хейли К. С., Гамильтон А., Гай Д. Р., Тинч А. Е., Таггарт Дж. Б., МакЭндрю Б. Дж., Бишоп СК. Локусы основных количественных признаков влияют на устойчивость атлантического лосося к инфекционному некрозу поджелудочной железы ( Salmo salar ). Генетика. 2008. 178 (2): 1109–15.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

99.

Moen T, Baranski M, Sonesson AK, Kjøglum S. Подтверждение и точное картирование основного QTL для устойчивости к инфекционному некрозу поджелудочной железы у атлантического лосося ( Salmo salar ): ассоциации на уровне популяции между маркерами и черта характера.BMC Genomics. 2009; 10: 368.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

100.

Houston RD, Haley CS, Hamilton A, Guy DR, Mota-Velasco JC, Gheyas AA, Tinch AE, Taggart J, Bron J, Starkey W. Восприимчивость мальков атлантического лосося к пресноводному инфекционному некрозу поджелудочной железы составляет во многом объясняется большим QTL. Наследственность. 2010. 105 (3): 318–27.

CAS PubMed Статья Google Scholar

101.

Моен Т., Торгерсен Дж., Санти Н., Дэвидсон В.С., Барански М., Эдегард Дж., Кьёглум С., Велле Б., Кент М., Любенецкий К.П. Эпителиальный кадгерин определяет устойчивость атлантического лосося к вирусу инфекционного некроза поджелудочной железы. Генетика. 2015; 200 (4): 1313–26.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

102.

Geng X, Sha J, Liu S, Bao L, Zhang J, Wang R, Yao J, Li C, Feng J, Sun F. Полногеномное исследование ассоциации сома показывает наличие функциональных узлов. родственных генов в пределах QTL для устойчивости к болезни столбчатых.BMC Genomics. 2015; 16: 196.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

103.

Чжоу Т., Лю С., Гэн Х, Цзинь И, Цзян Ц., Бао Л., Яо Дж, Чжан И, Чжан Дж, Сунь Л. и др. QTL для устойчивости сомов к болезням ESC, как выявлено в результате полногеномного исследования ассоциации. Mol Genet Genomics. 2017; 292: 231–42.

104.

Jin Y, Zhou T, Geng X, Liu S, Chen A, Yao J, Jiang C, Tan S, Su B, Liu Z. Полногеномное ассоциативное исследование SNP, связанных с тепловым стрессом, у сомов .Anim Genet. 2016. doi: 10.1111 / age.12482.

105.

Ван Х, Лю С., Цзян Ц., Гэн Х, Чжоу Т, Ли Н, Бао Л, Ли И, Яо Дж, Ян Й и др. Множественные QTL между штаммами и внутри штамма предполагают очень сложную генетическую архитектуру толерантности к гипоксии у канальных сомов. Mol Gen Genomics. 2016. DOI: 10.1007 / s00438-016-1256-2.

106.

Гэн X, Лю С., Яо Дж., Бао Л., Чжан Дж., Ли Ц., Ван Р, Ша Дж, Цзэн П., Чжи Д. и др. Исследование геномной ассоциации выявляет несколько областей, связанных с размером головы у сома.G3: Гены / Геномы / Генетика. 2016; 6 (10): 3389–98.

Google Scholar

107.

Vallejo RL, Palti Y, Liu S, Marancik DP, Wiens GD. Проверка связанного QTL на устойчивость к бактериальным болезням холодной воды и размер селезенки на хромосоме радужной форели Omy19. Аквакультура. 2014; 432: 139–43.

CAS Статья Google Scholar

108.

Palti Y, Vallejo RL, Gao G, Liu S, Hernandez AG, Rexroad III CE, Wiens GD.Обнаружение и проверка QTL, влияющего на устойчивость к бактериальным болезням холодной воды у радужной форели, с использованием секвенирования ДНК, связанного с сайтами рестрикции. PLoS One. 2015; 10 (9): e0138435.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

109.

Лю С., Вальехо Р.Л., Палти Й, Гао Дж., Маранчик Д.П., Эрнандес АГ, Винс Г.Д. Идентификация маркеров однонуклеотидного полиморфизма, связанных с устойчивостью к бактериальным болезням холодной воды и размером селезенки у радужной форели.Фронт Жене. 2015; 6: 298.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

110.

Yu Z, Guo X. Идентификация и картирование QTL устойчивости к болезням у восточной устрицы, Crassostrea virginica Gmelin. Аквакультура. 2006. 254 (1): 160–70.

CAS Статья Google Scholar

111.

Plough LV, Hedgecock D. Количественный анализ локуса признаков стадии инбридинга депрессии тихоокеанской устрицы Crassostrea gigas .Генетика. 2011. 189 (4): 1473–86.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

112.

Гуо Х, Ли Кью, Ван КЗ, Конг Л.Ф. Генетическое картирование и анализ QTL признаков, связанных с ростом тихоокеанских устриц. Mar Biotechnol. 2012. 14 (2): 218–26.

CAS PubMed Статья Google Scholar

113.

Plough L, Shin G, Hedgecock D. Генетическая неприкосновенность – главный фактор выживаемости типа III в экспериментальных семьях высокопродуктивных морских двустворчатых моллюсков.Mol Ecol. 2016; 25 (4): 895–910.

CAS PubMed Статья Google Scholar

114.

He Y, Yu H, Bao Z, Zhang Q, Guo X. Мутация в промоторной области ингибитора сериновой протеазы придает устойчивость Perkinsus marinus восточной вешенке ( Crassostrea virginica ). Fish Shellfish Immunol. 2012; 33 (2): 411–7.

CAS PubMed Статья Google Scholar

115.

Фудзи К., Хасегава О., Хонда К., Кумасака К., Сакамото Т., Окамото Н. Маркерное разведение устойчивой к лимфоцистозу японской камбалы ( Paralichthys olivaceus ). Аквакультура. 2007. 272 (1–4): 291–5.

Артикул Google Scholar

116.

Одзаки А., Араки К., Окамото Х., Окаути М., Мусиаке К., Йошида К., Цудзаки Т., Фудзи К., Сакамото Т., Окамото Н. Прогресс селекции с использованием маркеров ДНК в марикультуре рыб.Агентство Bull Fisheries Res. 2012; 35: 31–7.

Google Scholar

117.

Chen J, Wang Y, Yue Y, Xia X, Du Q, Chang Z. Новая специфическая для самцов последовательность ДНК у обыкновенного карпа, Cyprinus carpio . Зонды Mol Cell. 2009. 23 (5): 235–9.

PubMed Статья CAS Google Scholar

118.

Lee BY, Penman DJ, Kocher TD. Идентификация региона, определяющего пол, у нильской тилапии ( Oreochromis niloticus ) с использованием массового сегрегантного анализа.Anim Genet. 2003. 34 (5): 379–83.

CAS PubMed Статья Google Scholar

119.

Ninwichian P, Peatman E, Liu H, Kucuktas H, Somridhivej B, Liu S, Li P, Jiang Y, Sha Z, Kaltenboeck L. Карта генетического сцепления сома второго поколения и ее интеграция с BAC физическая карта. G3: Гены | Геномы | Генетика. 2012; 2 (10): 1233–41.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

120.

Li L, Xiang J, Liu X, Zhang Y, Dong B, Zhang X. Построение основанной на AFLP карты генетического сцепления для морского гребешка Zhikong, Chlamys farreri Jones et Preston и картирование сцепленных с полом маркеров. Аквакультура. 2005. 245 (1–4): 63–73.

CAS Статья Google Scholar

121.

Chen S, Li J, Deng S, Tian Y, Wang Q, Zhuang Z, Sha Z, Xu J. Выделение женских маркеров AFLP и молекулярная идентификация генетического пола в полугладкой подошве языка ( Cynoglossus semilaevis ).Mar Biotechnol. 2007. 9 (2): 273–80.

CAS PubMed Статья Google Scholar

122.

Pérez F, Erazo C, Zhinaula M, Volckaert F, Calderón J. Карта сцепления белой креветки Penaeus (Litopenaeus) vannamei с учетом пола на основе маркеров AFLP. Аквакультура. 2004. 242 (1–4): 105–18.

Артикул CAS Google Scholar

123.

Ли И, Бирн К., Миггиано Э, Ван В., Мур С., Киз С., Крокос П., Престон Н., Ленерт С.Генетическое картирование креветки курума Penaeus japonicus с использованием маркеров AFLP. Аквакультура. 2003. 219 (1–4): 143–56.

CAS Статья Google Scholar

124.

Фудзи К., Йошида К., Хаттори К., Одзаки А., Араки К., Окаучи М., Кубота С., Окамото Н., Сакамото Т. Идентификация сцепленного с полом локуса у желтохвоста, Seriola quinqueradiata. Аквакультура. 2010; 308: S51–5.

CAS Статья Google Scholar

125.

Фелип А., Янг В.П., Уилер П.А., Торгаард Г.Х. Подход на основе AFLP для идентификации маркеров, связанных с полом, у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура. 2005. 247 (1–4): 35–43.

CAS Статья Google Scholar

126.

Meuwissen THE, Hayes BJ, Goddard ME. Прогнозирование общей генетической ценности с использованием карт плотных маркеров по всему геному. Генетика. 2001. 157 (4): 1819–29.

CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

127.

Hayes BJ, Bowman PJ, Чемберлен AJ, Годдард ME. Приглашенный обзор: Геномная селекция молочного скота: успехи и проблемы. J Dairy Sci. 2009. 92 (2): 433–43.

CAS PubMed Статья Google Scholar

128.

Ragavendran A, Muir WM. Геномный отбор в аквакультуре: методы и практические соображения. В: Секвенирование следующего поколения и полногеномный отбор в аквакультуре. Эймс: Вили-Блэквелл; 2011. с. 165–183.

129.

Sonesson AK. Геномный отбор для аквакультуры: принципы и процедуры. В: Секвенирование следующего поколения и полногеномный отбор в аквакультуре. Эймс: Вили-Блэквелл; 2011. с. 151–163.

130.

Ødegård J, Moen T, Santi N, Korsvoll SA, Kjøglum S, Meuwissen THE. Геномное предсказание в смешанной популяции атлантического лосося ( Salmo salar ). Фронт Жене. 2014; 5: 402.

PubMed PubMed Central Google Scholar

131.

Шиллинг Дж., Непомучено А.И., Планшар А, Йодер Дж. А., Келли Р. М., Муддиман, округ Колумбия, Дэниэлс Х. В., Хирамацу Н., Ридинг Б. Дж.. Машинное обучение выявляет специфичные для пола паттерны экспрессии 17β-эстрадиола в белках плазмы белого окуня ( Morone americana ). Протеомика. 2015; 15 (15): 2678–90.

CAS PubMed Статья Google Scholar

132.

Немудрый А.А., Валетдинова К.Р., Медведев С.П., Закян С.М. Системы редактирования генома TALEN и CRISPR / Cas: инструменты открытия.Acta Nat. 2014. 6 (3): 19–40.

CAS Google Scholar

133.

Hwang WY, Fu Y, Reyon D, Maeder ML, Tsai SQ, Sander JD, Peterson RT, Yeh JRJ, Joung JK. Эффективное редактирование генома рыбок данио с помощью системы CRISPR-Cas. Nat Biotech. 2013; 31 (3): 227–9.

CAS Статья Google Scholar

134.

Jao LE, Wente SR, Chen W. Эффективное мультиплексное двуаллельное редактирование генома рыбок данио с использованием системы нуклеаз CRISPR.Proc Natl Acad Sci. 2013. 110 (34): 13904–9.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

135.

Li M, Yang H, Zhao J, Fang L, Shi H, Li M, Sun Y, Zhang X, Jiang D, Zhou L. Эффективное и наследуемое нацеливание на гены в тилапии с помощью CRISPR / Cas9. Генетика. 2014; 197 (2): 591–9.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

136.

Эласвад А. Генетические технологии для исследования устойчивости к болезням и улучшения у сомов. Кандидатская диссертация. Оберн: Обернский университет; 2016.

137.

Бьюкенен Дж. Нормативное одобрение генетически модифицированного лосося AquAdvantage. В: Геном растений и животных. XXIV Конференция: Геном растений и животных. Сан Диего; 2016.

138.

Уолтц Э. Гриб CRISPR, отредактированный генами, не подлежит регулированию в США. Nat News. 2016; 532: 293.

CAS Статья Google Scholar

139.

Danchin-Burge C, Hiemstra S, Blackburn H. Сохранение ex situ голштино-фризского скота: сравнение коллекций гермоплазмы Нидерландов, Франции и США. J Dairy Sci. 2011. 94 (8): 4100–8.

CAS PubMed Статья Google Scholar

140.

Юэ XP, Dechow C, Лю WS. Ограниченное количество линий Y-хромосомы присутствует у североамериканских голштинов. J Dairy Sci. 2015; 98 (4): 2738–45.

CAS PubMed Статья Google Scholar

141.

Tiersch TR, Green CC. Криоконсервация водных видов. 2-е изд. Батон-Руж: Всемирное общество аквакультуры; 2011.

Google Scholar

142.

Стар B, Недербрагт А.Дж., Йентофт С., Гримхольт Ю., Мальмстрём М., Грегерс Т.Ф., Рунге ТБ, Паулсен Дж., Солбаккен М.Х., Шарма А. Последовательность генома атлантической трески свидетельствует об уникальной иммунной системе. Природа. 2011. 477 (7363): 207–10.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

143.

Макгоу С.Е., Гросс Дж. Б., Акен Б., Блин М., Боровски Р., Чалопин Д., Хино Х., Джеффри В. Р., Кин А., Ма Л. и др. Геном пещерной рыбы обнаруживает гены-кандидаты на потерю глаз. Nat Commun. 2014; 5: 5307.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

144.

Amemiya CT, Alfoldi J, Lee AP, Fan S, Philippe H, MacCallum I, Braasch I, Manousaki T., Schneider I, Rohner N, et al. Геном африканских латимерии дает представление об эволюции четвероногих.Природа. 2013. 496 (7445): 311–6.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

145.

Xu P, Zhang X, Wang X, Li J, Liu G, Kuang Y, Xu J, Zheng X, Ren L, Wang G. Последовательность генома и генетическое разнообразие карпа обыкновенного, Cyprinus carpio . Нат Жене. 2014; 46 (11): 1212–9.

CAS PubMed Статья Google Scholar

146.

Wang Y, Lu Y, Zhang Y, Ning Z, Li Y, Zhao Q, Lu H, Huang R, Xia X, Feng Q. Проект генома белого амура ( Ctenopharyngodon idellus ) дает представление о его эволюции и вегетарианская адаптация. Нат Жене. 2015; 47 (6): 625–31.

CAS PubMed Статья Google Scholar

147.

Smith JJ, Kuraku S, Holt C., Sauka-Spengler T., Jiang N, Campbell MS, Yandell MD, Manousaki T., Meyer A, Bloom OE, et al.Секвенирование генома морской миноги ( Petromyzon marinus ) дает представление об эволюции позвоночных. Нат Жене. 2013. 45 (4): 415–21.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

148.

Касахара М., Нарус К., Сасаки С., Накатани И., Ку В., Асан Б., Ямада Т., Нагаясу И., Дои К., Касаи Ю. и др. Проект генома medaka и анализ эволюции генома позвоночных. Природа. 2007. 447 (7145): 714–9.

CAS PubMed Статья Google Scholar

149.

Schartl M, Walter RB, Shen Y, Garcia T, Catchen J, Amores A, Braasch I., Chalopin D, Volff J-N, Lesch K-P, et al. Геном плоской рыбы, Xiphophorus maculatus , дает представление об эволюционной адаптации и нескольких сложных чертах. Нат Жене. 2013. 45 (5): 567–72.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

150.

Tine M, Kuhl H, Gagnaire P-A, Louro B, Desmarais E, Martins RS, Hecht J, Knaust F, Belkhir K, Klages S. Геном морского окуня и его вариации дают представление об адаптации к эвригалинности и видообразованию. Nat Commun. 2014; 5: 5770.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

151.

Венкатеш Б., Ли А. П., Рави В., Маурья А. К., Лиан М. М., Суонн Дж. Б., Охта И., Флажник М. Ф., Суто И., Касахара М. и др.Геном слоновой акулы дает уникальное представление об эволюции гнатомов. Природа. 2014. 505 (7482): 174–9.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

152.

Chen S, Zhang G, Shao C, Huang Q, Liu G, Zhang P, Song W, An N, Chalopin D, Volff J-N. Полногеномная последовательность камбалы дает представление об эволюции половых хромосом ZW и адаптации к бентосному образу жизни. Нат Жене. 2014; 46 (3): 253–60.

CAS PubMed Статья Google Scholar

153.

Jones FC, Grabherr MG, Chan YF, Russell P, Mauceli E, Johnson J, Swofford R, Pirun M, Zody MC, White S, et al. Геномные основы адаптивной эволюции трехиглой колюшки. Природа. 2012. 484 (7392): 55–61.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

154.

Jaillon O, Aury J-M, Brunet F, Petit J-L, Stange-Thomann N, Mauceli E, Bouneau L, Fischer C, Ozouf-Costaz C, Bernot A, et al. Дупликация генома костистых рыб Tetraodon nigroviridis выявляет ранний прокариотип позвоночных.Природа. 2004. 431 (7011): 946–57.

PubMed Статья Google Scholar

155.

Фигерас А., Робледо Д., Корвело А, Эрмида М., Перейро П., Рубиоло Дж. А., Гомес-Гарридо Дж., Каррете Л., Белло Х, Гут М. и др. Полногеномное секвенирование тюрбота (Scophthalmus maximus; Pleuronectiformes): рыба, адаптированная к донной жизни. ДНК Res. 2016; 23 (3): 181–192.

156.

Wu C, Zhang D, Kan M, Lv Z, Zhu A, Su Y, Zhou D, Zhang J, Zhang Z, Xu M.Черновой геном большого желтого горбыля свидетельствует о хорошо развитом врожденном иммунитете. Nat Commun. 2014; 5: 5227.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

157.

Хоу К., Кларк М.Д., Торроха К.Ф., Торранс Дж., Бертло К., Маффато М., Коллинз Дж. Э., Хамфрей С., Макларен К., Мэтьюз Л. и др. Эталонная последовательность генома рыбок данио и ее связь с геномом человека. Природа. 2013. 496 (7446): 498–503.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

158.

Лю С., Чжан И, Чжоу З, Вальдбизер Дж, Сан Ф, Лу Дж, Чжан Дж, Цзян И, Чжан Х, Ван Х. Эффективная сборка и аннотация транскриптома сома с помощью анализа РНК-Seq удвоенной гаплоидной гомозиготы . BMC Genomics. 2012; 13: 595.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

159.

Палти Y, Гао Джи, Миллер М.Р., Вальехо Р.Л., Уиллер П.А., Квиллет Е, Яо Дж., Торгаард Г.Х., Салем М., Рексроад СЕ. Ресурс однонуклеотидных полиморфизмов радужной форели, созданный путем секвенирования ДНК удвоенных гаплоидов, связанных с сайтами рестрикции.Мол Экол Ресур. 2014. 14 (3): 588–96.

CAS PubMed Статья Google Scholar

160.

Кристенсен К.А., Брунелли Дж. П., Ламберт М.Дж., ДеКонинг Дж., Филлипс Р.Б., Торгаард Г.Х. Выявление однонуклеотидных полиморфизмов из транскриптома организма с дупликацией всего генома. BMC Bioinformatics. 2013; 14: 325.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

161.

Al-Tobasei R: Анализ аллельного дисбаланса в объединенных образцах RNA-Seq выявляет генетические маркеры, связанные с мышцами, у радужной форели: улучшенные методы биоинформатики. В: Геном растений и животных. XXIV Конференция: Геном растений и животных. Сан Диего; 2016.

162.

Ван Берс Н., Кройманс Р., Гроенен М., Диббитс Б., Комен Дж. Обнаружение маркеров SNP и генотипирование у тилапии. Мол Экол Ресур. 2012; 12 (5): 932–41.

PubMed Статья Google Scholar

163.

Li C, Beck BH, Fuller SA, Peatman E. Аннотации транскриптомов и обнаружение маркеров у белого окуня ( Morone chrysops ) и полосатого окуня ( Morone saxatilis ). Anim Genet. 2014. 45 (6): 885–7.

CAS PubMed Статья Google Scholar

164.

Yu Y, Wei J, Zhang X, Liu J, Liu C, Li F, Xiang J. Обнаружение SNP в транскриптоме белой тихоокеанской креветки Litopenaeus vannamei путем секвенирования следующего поколения.PLoS One. 2014; 9 (1): e87218.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

165.

Ван СМ, Бай З.Й., Хэ XP, Лин Джи, Ся Дж.Х., Сунь Ф, Ло ЛК, Фэн Ф, Чжу З.Й., Юэ Г.Х. Карта сцепления с высоким разрешением для сравнительного анализа генома и точного картирования QTL азиатского морского окуня, Lates calcarifer. BMC Genomics. 2011; 12: 174.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

166.

Лиен С., Гидскехауг Л., Моэн Т., Хейс Б.Дж., Берг П.Р., Дэвидсон В.С., Омхольт СВ, Кент М.П. Плотная карта сцепления на основе SNP для атлантического лосося ( Salmo salar ) выявляет расширенную гомеологию хромосом и разительные различия в паттернах рекомбинации, специфичных для пола. BMC Genomics. 2011; 12: 615.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

167.

Гарби К., Готье А., Данцманн Р.Г., Гарби С., Сакамото Т., Хойхайм Б., Таггарт Дж. Б., Кэрни М., Пауэлл Р., Криг Ф. и др.Карта сцепления для кумжи ( Salmo trutta ): гомеология хромосом и сравнительная организация генома с другими лососевыми рыбами. Генетика. 2006. 172 (4): 2405–19.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

168.

Li Y, Liu S, Qin Z, Waldbieser G, Wang R, Sun L, Bao L, Danzmann RG, Dunham R, Liu Z. Построение генетической карты с высокой плотностью и высоким разрешением и ее интеграция с физической картой на основе BAC в канальном соме.ДНК Res. 2015; 22 (1): 39–52.

CAS PubMed Статья Google Scholar

169.

Liu S, Li Y, Qin Z, Geng X, Bao L, Kaltenboeck L, Kucuktas H, Dunham R, Liu Z. Картирование межвидовых генетических связей с высокой плотностью позволяет понять геномную несовместимость между канальным сомом и голубым сом. Anim Genet. 2016; 47 (1): 81–90.

CAS PubMed Статья Google Scholar

170.

Пэн У, Сюй Дж, Чжан И, Фэн Дж, Дун Ц., Цзян Л., Фэн Дж, Чен Б., Гонг И, Чен Л. и др. Карта сцепления сверхвысокой плотности и карта QTL для половых и связанных с ростом признаков карпа ( Cyprinus carpio ). Научный доклад 2016; 6: 26693.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

171.

Чистяков Д.А., Цигенопулос К.С., Лагнель Дж., Го Ю.М., Хеллеманс Б., Хейли С.С., Фолькаерт Ф.А.М, Котулас Г.Комбинированная карта связи AFLP и микросателлитов и экспериментальный сравнительный геномный анализ европейского морского окуня Dicentrarchus labrax L. Anim Genet. 2008. 39 (6): 623–34.

CAS PubMed Статья Google Scholar

172.

Ся Дж. Х., Лю Ф., Чжу З.Й., Фу Дж., Фэн Дж., Ли Дж., Юэ Г. Х. Консенсусная карта сцепления белого амура ( Ctenopharyngodon idella ) на основе микросателлитов и SNP. BMC Genomics. 2010; 11 (1): 554.

Артикул CAS Google Scholar

173.

Кастаньо-Санчес К., Фудзи К., Одзаки А., Хасегава О, Сакамото Т., Моришима К., Накаяма I, Фудзивара А., Масаока Т., Окамото Х. и др. Карта генетического сцепления второго поколения японской камбалы ( Paralichthys olivaceus ). BMC Genomics. 2010; 11 (1): 554.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

174.

Guyomard R, Boussaha M, Krieg F, Hervet C, Quillet E. Синтетическая карта сцепления радужной форели позволяет по-новому взглянуть на дупликацию всего генома лососевых и сохранение синтении костистых рыб. BMC Genet. 2012; 13:15.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

175.

Цзяо В., Фу Х, Доу Дж, Ли Х, Су Х, Мао Дж, Ю Кью, Чжан Л., Ху Х, Хуанг Х и др. Связывание с высоким разрешением и картирование локусов количественных признаков при помощи секвенирования генома: создание интегративной геномной основы для двустворчатого моллюска.ДНК Res. 2013. doi: 10.1093 / dnares / dst043.

176.

Цигенопулос С.С., Луро Б., Хатциплис Д., Лагнель Дж., Вогиаци Э., Луковитис Д., Франч Р., Сарропулу Е., Пауэр Д.М., Патарнелло Т. и др. Карта генетического сцепления второго поколения для морского леща Sparus aurata L . Mar Genomics. 2014; 18 Pt A: 77–82.

PubMed Статья Google Scholar

177.

Барански М., Гопикришна Г., Робинсон Н.А., Катнени В.К., Шекхар М.С., Шанмугакартик Дж., Йотивел С., Гопал С., Равичандран П., Кент М. и др.Разработка карты сцепления высокой плотности для креветок черного тигра ( Penaeus monodon ) на основе cSNP. PLoS One. 2014; 9 (1): e85413.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

178.

Андриантахина Ф., Лю X, Хуанг Х. Построение генетической карты и определение локуса количественных признаков (QTL) признаков, связанных с ростом, у Litopenaeus vannamei для селективного разведения. PLoS One.2013; 8 (9): e75206.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

179.

Yu Y, Zhang X, Yuan J, Li F, Chen X, Zhao Y, Huang L, Zheng H, Xiang J. Обследование генома и построение генетической карты высокой плотности обеспечивают геномные и генетические ресурсы для Тихого океана Белая креветка Litopenaeus vannamei . Научный доклад 2015; 5: 15612.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

180.

Ли Б., Ли В. Дж., Стрелман Дж. Т., Карлтон К. Л., Хоу А. Е., Хулата Дж., Слеттан А., Стерн Дж. Э., Тераи Ю., Кочер Т. Д.. Карта генетического сцепления второго поколения тилапии ( Oreochromis spp.). Генетика. 2005. 170 (1): 237–44.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

181.

Лю Ф, Сунь Ф, Ли Дж., Ся Дж. Х., Лин Дж., Ту Р. Дж., Юэ Г. Х. Карта сцепления солеустойчивой тилапии на основе микросателлитов ( Oreochromis mossambicus x Oreochromis spp .) и картирование локусов, определяющих пол. BMC Genomics. 2013; 14: 58.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

182.

Охара Э., Нисимура Т., Нагакура И., Сакамото Т., Мусиаке К., Окамото Н. Карты генетического сцепления двух желтохвостых ( Seriola quinqueradiata и Seriola lalandi ). Аквакультура. 2005. 244 (1–4): 41–8.

CAS Статья Google Scholar

183.

Aoki J-y, Kai W, Kawabata Y, Ozaki A, Yoshida K, Koyama T., Sakamoto T., Araki K. Физические карты и карты сцепления желтохвоста второго поколения ( Seriola quinqueradiata ) и сравнение синтении с четырьмя модельными рыбами. BMC Genomics. 2015; 16: 406.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

184.

Ozaki A, Aoki Jy, Usuki H, Yoshida K, Noda T, Hotta T, Mizuochi H, Chujo T, Shima Y, Araki K: карта генетических связей высокой плотности для желтохвоста (Seriola quinqueradiata), содержащая EST SNP на основе.В: Геном растений и животных. XXIV Конференция: Геном растений и животных. Сан Диего; 2016

185.

Küttner E, Moghadam HK, Skúlason S, Danzmann RG, Ferguson MM. Генетическая архитектура массы тела, фактора состояния и возраста полового созревания у исландского арктического гольца ( Salvelinus alpinus ). Mol Gen Genomics. 2011. 286 (1): 67–79.

Артикул CAS Google Scholar

186.

Norman JD, Danzmann RG, Glebe B, Ferguson MM.Генетические основы солеустойчивости арктического гольца ( Salvelinus alpinus ). BMC Genet. 2011; 12: 81.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

187.

Лю П., Ван Л., Ван З.Й., Йе БК, Хуанг С., Вонг С.М., Юэ Г.Х. Картирование QTL для устойчивости к вирусному нервному некрозу у азиатского морского окуня. Mar Biotechnol. 2016; 18 (1): 107–16.

CAS PubMed Статья Google Scholar

188.

Ван CM, Lo LC, Zhu ZY, Yue GH. Сканирование генома на предмет локусов количественных признаков, влияющих на признаки роста в семействе F1 азиатского морского окуня ( Lates calcarifer ). BMC Genomics. 2006; 7: 274.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

189.

Ся Дж.Х., Линь Дж., Хэ Х, Юньпин Б., Лю П, Лю Ф, Сунь Ф, Ту Р, Юэ Дж. Картирование локусов количественных признаков жирных кислот омега-3 у азиатского морского окуня. Mar Biotechnol.2014; 16 (1): 1–9.

CAS PubMed Статья Google Scholar

190.

Baranski M, Moen T, Våge DI. Картирование локусов количественных признаков цвета мяса и признаков роста атлантического лосося ( Salmo salar ). Genet Sel Evol. 2010; 42: 17.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

191.

Цай Х., Гамильтон А, Гай Д., Хьюстон Р.Однонуклеотидные полиморфизмы в гене инсулиноподобного фактора роста 1 (IGF1) связаны с признаками роста у выращиваемых атлантических лососей. Anim Genet. 2014; 45 (5): 709–15.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

192.

Цай Х.Й., Гамильтон А., Гай Д.Р., Тинч А.Е., Бишоп С.К., Хьюстон, Род. Генетическая архитектура роста и признаки филе атлантического лосося, выращенного на фермах ( Salmo salar ).BMC Genet. 2015; 16:51.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

193.

Гутьеррес А.П., Любенецки К.П., Фукуи С., Витлер Р.Е., Свифт Б., Дэвидсон В.С. Обнаружение локусов количественных признаков (QTL), относящихся к старению и позднему половому созреванию у атлантического лосося ( Salmo salar ). Mar Biotechnol. 2014. 16 (1): 103–10.

CAS PubMed Статья Google Scholar

194.

Gonen S, Baranski M, Thorland I, Norris A, Grove H, Arnesen P, Bakke H, Lien S, Bishop SC, Houston R. Картирование и проверка основного QTL, влияющего на устойчивость к заболеванию поджелудочной железы (альфавирусу лосося) у атлантического лосося ( Salmo salar ). Наследственность. 2015; 115 (5): 405–14.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

195.

Чжан И, Сюй П, Лу Ц, Куанг И, Чжан Х, Цао Д, Ли Ц, Чанг И, Хоу Н, Ли Х.Картирование генетического сцепления и анализ QTL, связанных с мышечными волокнами карпа ( Cyprinus carpio L. ). Mar Biotechnol. 2011; 13 (3): 376–92.

CAS PubMed Статья Google Scholar

196.

Boulton K, Massault C, Houston RD, de Koning DJ, Haley CS, Bovenhuis H, Batargias C, Canario AV, Kotoulas G, Tsigenopoulos CS. QTL, влияющий на морфометрические признаки и реакцию на стресс у морского леща морского леща ( Sparus aurata ).Аквакультура. 2011. 319 (1): 58–66.

Артикул Google Scholar

197.

Laghari MY, Lashari P, Zhang X, Xu P, Narejo NT, Liu Y, Mehboob S, Al-Ghanim K, Zhang Y, Sun X. Отображение QTL для признаков, связанных со способностью плавания, у Cyprinus carpio L . Mar Biotechnol. 2014. 16 (6): 629–37.

CAS PubMed Статья Google Scholar

198.

Louro B, Kuhl H, Tine M, de Koning D-J, Batargias C, Volckaert FA, Reinhardt R, Canario AV, Power DM.Характеристика и уточнение локусов количественных признаков, связанных с ростом, у европейского морского окуня ( Dicentrarchus labrax ) с использованием сравнительного подхода. Аквакультура. 2016; 455: 8–21.

CAS Статья Google Scholar

199.

Massault C, Hellemans B, Louro B, Batargias C, Van Houdt J, Canario A, Volckaert F, Bovenhuis H, Haley C, De Koning D. QTL для массы тела, морфометрических признаков и реакции на стресс в европейских странах. морской окунь Dicentrarchus labrax .Anim Genet. 2010. 41 (4): 337–45.

CAS PubMed Google Scholar

200.

Робинсон Н.А., Гопикришна Г., Барански М., Катнени В.К., Шекхар М.С., Шанмугакартик Дж., Йотивел С., Гопал С., Равичандран П., Гиттерл Т. QTL для устойчивости к вирусу синдрома белых пятен и локус, определяющий пол в Индийская черная тигровая креветка ( Penaeus monodon ). BMC Genomics. 2014; 15: 731.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

201.

Wang L, Fan C, Liu Y, Zhang Y, Liu S, Sun D, Deng H, Xu Y, Tian Y, Liao X. Сканирование генома для выявления локусов количественных признаков, связанных с устойчивостью к инфекции Vibrio anguillarum у японской камбалы ( Paralichthys olivaceus ) объемным сегрегантным анализом. Mar Biotechnol. 2014. 16 (5): 513–21.

CAS PubMed Статья Google Scholar

202.

Sauvage C, Boudry P, De Koning DJ, Haley CS, Heurtebise S, Lapègue S.QTL устойчивости к летней смертности и нагрузке OsHV ‐ 1 у тихоокеанских устриц ( Crassostrea gigas ). Anim Genet. 2010. 41 (4): 390–9.

CAS PubMed Google Scholar

203.

Негрин-Баес Д., Наварро А., Афонсу Дж. М., Хинес Р., Заморано М.Дж. Обнаружение QTL, связанного с тремя деформациями скелета у морского леща ( Sparus aurata L. ): лордозом, сращением позвонков и аномалией челюсти. Аквакультура. 2015; 448: 123–7.

Артикул CAS Google Scholar

204.

Луковитис Д., Сарропулу Е., Цигенопулос С.С., Батаргиас С., Магулас А., Апостолидис А.П., Чатциплис Д., Котулас Г. Локусы количественных признаков, участвующие в определении пола и росте тела у морского леща дорадо ( Sparus aurata L .) Посредством целевого сканирования генома. PLoS One. 2011; 6 (1): e16599.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

205.

Massault C, Franch R, Haley C, De Koning D, Bovenhuis H, Pellizzari C, Patarnello T, Bargelloni L. Локусы количественных признаков устойчивости к пастереллезу рыб у морского леща-дорада ( Sparus aurata ). Anim Genet. 2011; 42 (2): 191–203.

CAS PubMed Статья Google Scholar

206.

Коцмарек А.Л., Фергюсон М.М., Данцманн Р.Г. Совместная локализация роста QTL с дифференциально экспрессируемыми генами-кандидатами у радужной форели.Геном. 2015. 58 (9): 393–403.

CAS PubMed Статья Google Scholar

207.

Вриндж Б.Ф., Девлин Р.Х., Фергюсон М.М., Могхадам, Гонконг, Сахрани Д., Данцманн Р.Г. Локусы количественных признаков, связанных с ростом, у домашней и дикой радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). BMC Genet. 2010; 11: 63.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

208.

Ледер Э., Данцманн Р., Фергюсон М. Ген-кандидат, часы, локализован в области локуса количественного признака времени нереста у радужной форели. J Hered. 2006. 97 (1): 74–80.

CAS PubMed Статья Google Scholar

209.

Истон А., Могхадам Х., Данцманн Р., Фергюсон М. Генетическая архитектура скорости эмбрионального развития и генетическая ковариация с возрастом созревания у радужной форели Oncorhynchus mykiss .J Fish Biol. 2011; 78 (2): 602–23.

CAS PubMed Статья Google Scholar

210.

Миллер М.Р., Брунелли Дж. П., Уилер П.А., Лю С., REXROAD CE, Палти Y, Доу CQ, Торгаард Г.Х. Консервативный гаплотип контролирует параллельную адаптацию в географически удаленных популяциях лососевых. Mol Ecol. 2012. 21 (2): 237–49.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

211.

Перри Г.М., Мартынюк С.М., Фергюсон М.М., Данцманн Р.Г. Генетические параметры верхней термостойкости и связанных с ростом признаков радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура. 2005. 250 (1): 120–8.

CAS Статья Google Scholar

212.

Баервальд М., Петерсен Дж., Хедрик Р., Шислер Г., Мэй Б. Локус количественного признака основного эффекта для устойчивости к вихревой болезни, идентифицированный у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ).Наследственность. 2011; 106 (6): 920–6.

CAS PubMed Статья Google Scholar

213.

Campbell NR, LaPatra SE, Overturf K, Towner R, Narum SR. Ассоциативное картирование признаков устойчивости к болезням у радужной форели с использованием секвенирования ДНК, связанной с сайтами рестрикции. G3: Гены / Геномы / Генетика. 2014; 4 (12): 2473–81.

Артикул Google Scholar

214.

Родригес М.Ф., ЛаПатра С., Уильямс С., Фамула Т., Мэй Б.Генетические маркеры, ассоциированные с устойчивостью к инфекционному некрозу кроветворения у радужной и стальной форели ( Oncorhynchus mykiss ) при обратном скрещивании. Аквакультура. 2004. 241 (1): 93–115.

CAS Статья Google Scholar

215.

Le Bras Y, Dechamp N, Krieg F, Filangi O, Guyomard R, Boussaha M, Bovenhuis H, Pottinger TG, Prunet P, Le Roy P. Обнаружение QTL с влиянием на способность осморегуляции у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ).BMC Genet. 2011; 12 (1): 46.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

216.

Rexroad CE, Vallejo RL, Liu S, Palti Y, Weber GM. Локусы количественных признаков, влияющие на реакцию на стресс переполнения у радужной форели поколения F2, полученной в результате фенотипической селекции. Mar Biotechnol. 2013; 15 (5): 613–27.

CAS PubMed Статья Google Scholar

217.

Лю С., Вальехо Р.Л., Гао Дж., Палти Ю., Вебер Г.М., Эрнандес А., Рексроад III CE. Идентификация маркеров однонуклеотидного полиморфизма, связанных с ответом кортизола на скученность у радужной форели. Mar Biotechnol. 2015. 17 (3): 328–37.

CAS PubMed Статья Google Scholar

218.

Sánchez-Molano E, Cerna A, Toro MA, Bouza C, Hermida M, Pardo BG, Cabaleiro S, Fernández J, Martínez P. Выявление связанного с ростом QTL в тюрбо ( Scophthalmus maximus ).BMC Genomics. 2011; 12: 473.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

219.

Rodríguez-Ramilo ST, Toro MA, Bouza C, Hermida M, Pardo BG, Cabaleiro S, Martínez P, Fernández J. Выявление QTL для признаков, связанных с устойчивостью Aeromonas salmonicida, у камбалы ( Scophthalmus maximus ). BMC Genomics. 2011; 12: 541.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

220.
Родригес ‐ Рамило С., Фернандес Дж., Торо М., Боуза С., Эрмида М., Фернандес С., Пардо Б., Кабалейро С., Мартинес П. Выявление QTL для устойчивости и времени выживания Philasterides dicentrarchi в тюрбо ( Scophthalmus maximus ). Anim Genet. 2013. 44 (2): 149–57.
PubMed Статья Google Scholar

221.
Rodríguez-Ramilo ST, De La Herrán R, Ruiz-Rejón C, Hermida M, Fernández C, Pereiro P, Figueras A, Bouza C, Toro MA, Martínez P.Идентификация локусов количественных признаков, связанных с устойчивостью к вирусной геморрагической септицемии (VHS) у камбалы ( Scophthalmus maximus ): сравнение бактериальных, паразитарных и вирусных заболеваний. Mar Biotechnol. 2014; 16 (3): 265–76.
PubMed Статья CAS Google Scholar

222.
Лю Ф, Сун Ф, Ся Дж.Х., Ли Дж., Фу Г.Х., Лин Джи, Ту Р.Дж., Ван З.Й., Квек Д., Юэ Г.Х. Сканирование генома выявило значительную ассоциацию признаков роста с основным QTL и GHR2 у тилапии.Научный отчет 2014; 4: 7256.
CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

223.
Wang R, Li L, Huang Y, Luo F, Liang W, Gan X, Huang T, Lei A, Chen M, Chen L. Сравнительный анализ генома выявляет две большие делеции в геноме высоко пассированных аттенуированный штамм Streptococcus agalactiae YM001 по сравнению с родительским патогенным штаммом HN016. BMC Genomics. 2015; 16: 897.
PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

224.
Palaiokostas C, Bekaert M, Khan MG, Taggart JB, Gharbi K, McAndrew BJ, Penman DJ. Новый определяющий пол QTL у нильской тилапии ( Oreochromis niloticus ). BMC Genomics. 2015; 16: 171.
PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar