Микробиота растение: Микробиота перекрестнопарная – Хвойные растения, купить в Тюмени, с доставкой по России

редкий хвойник. Особенности выращивания и ухода

Выносливое, морозостойкое, огнеупорное и в тоже время тактильно-релаксное растение – микробиота. Любители хвойников, коллекционеры и начинающие садоводы, посадите в своём саду некапризного и редкого диковинного питомца, привлекательного в любое время года.

Мищенко Надежда / Flickr.com

Описание. Микробиота перекрёстнопарная, или курумкуринда, «сибирский кипарис» (Microbiota decussata) – стелящийся вечнозелёный хвойный кустарник высотой до 1,2 м и шириной до 5 м. Ветви свисают каскадами, образуя отчётливые ярусы, они пушистые и мягкие, так как чешуйчатая хвоя очень мелкая и плотно прижата к побегу. Поэтому растение очень приятно на ощупь. Разрастаясь за счёт самосева в ширину, в природе образует непроходимые куртины, зелёным ковром покрывая горную гальку. Живёт около 100 лет. Корневая система сильноветвистая, мочковатая, компактная. Побеги тёмно-зелёные летом (у некоторых сортов зелёно-голубые) с белёсыми зигзагами у основания хвои, на зиму побеги буреют, иногда с медным отливом, что делает микробиоту экзотическим зимним украшением сада.

Растение однодомное, но мужские и женские шишечки появляются редко и часто в разное время, поэтому получить зрелые плоды удаётся крайне редко. Зрелые шишки мелкие, до 6 мм, на 2-4 створки с одним бескрылым семечком. Всё это отличает микробиоту от можжевельников и туй. Растёт очень медленно, прирост 5-10 см в год. На севере Средней полосы в 10 лет микробиота – это «подушка» размерами 60×60 см и высотой 40 см.

Условия выращивания. Микробиота – это горное неприхотливое растение верхних границ лесов и открытых галечников, где покрывает большие площади. С местного языка она так и переводится «подушка на осыпи». Поэтому для её роста нужны  дренированные влажные почвы, хорошее освещение. При этом растение теневыносливо, выносит сильные морозы до -40°С (зимуя под снегом) и сквозные ветра, и к тому же устойчиво к пожарам (отлично растёт на гарях). Длительную жару на открытом солнце растение не приветствует. На севере лучше сажать микробиоту на открытом солнце, на юге – в полутень.

В любом случае, почва должна быть всегда влажной и воздухопроницаемой. Лучше всего подойдут лёгкие суглинки и супеси с прослойкой щебня на глубине 30-40 см. Застой воды этому растению противопоказан. Обязательно дождевание кроны в жаркую погоду.

cultivar413 / Flickr.com

В природе микробиоте составляют компанию пихты, ели, кедры, стланик, можжевельники, низкорослые клёны, берёзы и рябины, а также рододендроны. Именно эти растения можно с успехом применять для ландшафтного дизайна в качестве фона. Особенно хороша микробиота с вечнозелёными рододендронами и кедровым стлаником.

Посадка и уход. Микробиоту размножают практически всегда черенками и отпрысками. В июне побеги длиной 20-25 см отрывают с «пяточкой» и высаживают в рыхлый грунт с постоянным увлажнением. Осенью они укореняются. Пересадку переносит легко в любом возрасте и в любом время вегетации. Поскольку корневая система микробиоты компактная, достаточно выкопать посадочную яму глубиной 40 см и такой же ширины (на глинистых почвах глубже и шире), дно засыпав щебнем.

Почвосмесь состоит из местного грунта, супеси и торфа в соотношении 1:1:1. Так же можно добавить компост. Высаженный кустик полить и обсыпать галькой. Если почвы на участке сухие, то лучше сажать микробиоту в низину, если глинистые – на возвышенности. Через 3 года проводят первую подкормку органикой (или комплексными минеральными удобрениями) в начале лета и золой в конце лета. Микробиота не нуждается в рыхлении, лишь в прополке от сорняков.

S. Rae / Flickr.com

Если планируется невысокая изгородь внутри сада или как подбивка периферийной изгороди изнутри сада, то расстояние между растениями делают 0,5 м, в остальных случаях не меньше метра. В биоконструировании микробиота это отличный материал для живых постелей, ведь она хорошо сохраняет форму и поддаётся стрижке, а ветви кустарника упругие и мягкие. На хвойной подушке можно лежать – взрослое растение выдерживает человека. Формировка проводится в начале июня. На зиму молодые растения лучше укрыть лапником.

Микробиота – очень редкое (встречается только на склонах Сихотэ-Алиня в России и находится в Красной книге), древнее и обособленное растение от других Кипарисовых (единственное в своём роде), и представляет особенный интерес для коллекционеров.

Поэтому, если хотите озеленить свой участок приятными, декоративными выносливыми и неприхотливыми вечнозелёными растениями, посадите микробиоту. Чем не только сможете подчеркнуть дизайн сада, изгородей или создать «живую постель», но и спасёте вид от исчезновения с лица планеты.

экзотическое имя и простой характер. -Растения -М -Статьи

Хвойный кустарник под названием микробиота (Microbiota) вполне бы мог поселиться в вашем палисаднике. И пусть вас не пугает экзотическое название, за ним скрывается выносливое, неприхотливое растение, родина которого российский Дальний Восток. Там в горах Сихотэ-Алиня некогда остановило свое продвижение оледенение, благодаря чему флора этих мест сохранила немало интересных реликтовых видов.

Эндемик Сихоте-Алиня.

Удивительно, но это хвойное растение было обнаружено и описано русскими ботаниками только в 1921г, хотя не являлось исчезающим видом. Очевидно, это было связано с тем, что в горах Приморского края микробиота произрастает на больших высотах, имея довольно ограниченный ареал.

Суровые условия высокогорья с его морозами и сильными ветрами пригнули ее к земле, придали стланиковый вид.

В средней полосе России микробиота имеет вид распластанного по земле кустарника высотой до 0,5 м, шириной до 1,5м. Хвоя у нее мелкочешуйчатая, темно-зеленая слегка буроватая зимой, плотно прилегающая к ветвям. На молодых побегах и в основании ветвей наблюдается игловидная хвоя. Определение открытого растения оказалось делом непростым, поскольку оно обладало признаками можжевельника, кипарисовика и туи одновременно. В конце концов, кустарник был выделен в отдельный род семейства кипарисовых и наречен микробиотой перекрестнопарной (Microbiota decussata).

Микробиота долго оставалась малоизвестной даже среди ботаников. Несмотря на высокую декоративность у нее до сих пор отсутствуют сорта. Да в этом и нет необходимости, поскольку она от природы обладает редким изяществом почвопокровного хвойника. Развитый куст микробиоты имеет вид плотного холмика из густо переплетенных кружевных веточек ниспадающих от центра и периферии.

Он красив как издали, общим силуэтом, так и вблизи, ажурной вязью свежезеленой хвои.

Ей любое соседство к лицу.

Несимметричная крона делает микробиоту неприемлемой для регулярного сада, но очень привлекательной для пейзажного.

Хвойные группы и садики. Это может быть совсем небольшая группа их 3-5 участников, построенная на приеме контрастных сочетаний. Наиболее простой вариант: туя “Смарагд» (или ель «Коника», можжевельник «Скай Рокет» и т.п.) с пирамидальной кроной и изумрудно-зеленой хвоей, а по бокам с разных сторон микробиота и туя «Рейнголд», у которой дополнительно к плотной округлой кроне яркая медно-желтая окраска. Развитием этой тему может быть хвойный миксбордер с десятками действующих лиц, вытянутый вдоль фасадной части дома или дорожки.

Бордюр. Пейзажный сад предполагает свободную планировку и отсутствие искусственности. Этому стилю микробиота соответствует даже в том случае, если высадить ее в виде бордюра, который никогда не будет симметричным. Зато, высаженная вдоль дорожки лента микробиоты будет живописно наплывать на грунтовую тропу или изящно свешиваться с бордюрного камня, придавая мощению элемент естественности. Таким же образом можно окантовать по периметру небольшой хвойный сюжет, высаженный в окне мощения.

Плоский сад. Пологий склон или открытый ровный участок можно сделать плоским садом, если применить в его озеленении только приземистые многолетники и кустарники. Все вместе может стать одним лоскутным одеялом из плотно пригнанных друг к другу заплаток. В основном для этого применяют ковровые многолетники, способные образовывать плотные коврики и подушечки: живучки, барвинки, тимьяны и т.п. Но вкрапления приземистых подушковидных и распластанных кустарников способны вносить в подобные композиции привлекательное разнообразие. А если в разных местах положить валуны, то композиция плавно преобразится в плоский рокарий.

Каменистые сады. Так, видимо, устроено, что горным растениям камни к лицу, микробиота не исключение. Подражая природным сообществам, микробиоту хорошо размещать на склонах, порой весьма крутых. Хвойная группа с участием микробиоты, размещенная на видном месте в окне мощения, легко трансформируется в архитектурный рокарий.

Тепло ли тебе девица?

Несмотря на природную неприхотливость микробиота нуждается в плодородных, влажных почвах, на сухих бесплодных супесях она угнетена, страдает от недостатка влаги и питания. Но в то же время почва должна быть дренированной. Растет микробиота довольно медленно, отличается долголетием, практически не нуждается в обрезке.

Наиболее подходящим субстратом для ее выращивания является высокогумусный структурный суглинок. Хорошим его вариантом может быть смесь дерновой земли, перегноя, торфа и песка в соотношении 1:1:1:1. Место посадки должно быть полностью открытым солнцу. Недопустимо высокое стояние грунтовых вод и весеннее затопление паводковыми водами. Уход за микробиотой заключается, прежде всего, в поддержании условий для нормального питания растений. Этому способствуют удобрения, рыхления и поливы. Поливать растения показано по мере подсыхания верхнего горизонта почвы. Поливать лучше с орошением кроны, дождевальными приспособлениями. Удобрения начинают вносить через 2-3 года после посадки. Перегной (до 1 ведра на куст) неглубоко заделывают в прикорневую зону в первой половине лета. Комбинированное минеральное удобрение (до 30-80г/куст) рассыпают поверхностно с возраста 4-5 лет в пределах кроны ранней весной. На тяжелых почвах показаны периодические рыхления почвы, предзимнее утепляющее мульчирование торфом.

Впрочем, мульчировать приствольный круг кустарника целесообразно и еще по целому ряду причин. Мульча сохраняет влагу в прикорневой зоне растений, исподволь обогащает почву органикой и активизирует деятельность полезной почвенной микрофауны.

В природе микробиота весьма малочисленна и даже занесена в красную книгу России как редкий реликтовый вид. Но исчезнуть совсем ей не даст ее привлекательная внешность, благодаря которой растение интенсивно расселяется по свету. В садах и палисадниках она уже сейчас более многочисленна, чем на гольцах и высокогорьях Сихотэ-Алиня. Наверное, и ваш сад выиграл бы от ее присутствия.

Микробиота – выращиваем красивый хвойный кустарник

Содержание: 1. Что такое микробиота 2. С Дальнего Востока – на ваш участок 3. Посадка и уход 4. Для ландшафтного дизайна В поиске по-настоящему неприхотливого растения, садоводы часто натыкаются на такой кустарник как микробиота. Он удивительно похож на тую, однако отличается от нее в уходе. Чем примечателен этот вид хвойного и как за ним ухаживать – расскажем в нашем материале.

Что такое микробиота

Микробиота – это хвойный кустарник, относящийся к семейству кипарисовых. Его история, возможно, насчитывает сотни или тысячи лет, но люди узнали о его существовании в 20-е годы XX века. Растение было открыто на Дальнем Востоке, и считается эндемичным для этой местности видом. Микробиота – вечнозеленый куст. Растет «ковром», т.е. ветки стелются по земле. Взрослое растение редко превышает метр в высоту, зато в ширину – несколько метров. Его ветки плоские, а хвоинки, как у туи – чешуевидные и неколючие. С точки зрения ботаники существует только один вид – микробиота перекрестнопарная. Выделяют два сорта: • Якобсен. • Голдспот. Они различаются высотой – Якобсен не вырастает выше полуметра, а Голдспот – может вырасти до 100 см.

Кустарник занесен в Красную Книгу, однако в последнее время он вполне успешно размножается на дачных участках по всей территории России. Его удивительная стойкость к любым природным факторам позволяет выживать в любом уголке нашей большой страны.

С Дальнего Востока – на ваш участок

Размножить микробиоту можно черенкованием или при помощи семян. При первом способе во второй половине мая нужно отделить несколько свежих боковых побегов с пяткой (с кусочком ствола). Черенки замачивают в стимуляторе роста. После этого их нужно высадить в грунт и накрыть пленкой или колпаками, чтобы создать условия микропарника. Осенью их можно будет высаживать в школку на открытый грунт, а уже весной высадить на постоянное место. Способ с семенами очень непопулярен: чтобы они взошли нужно так много условий, что занимаются этим исключительно энтузиасты или профессиональные агрономы. Выбирая место для посадки, знайте: микробиоту можно смело посадить там, где другие растения не выжили бы. Однако если вы прицельно хотите вырастить большой красивый кустарник, найдите в меру солнечный участок вдали от ветра. Микробиота прекрасно будет чувствовать себя на возвышении, а также среди камней.

Посадка и уход

Выбрав подходящее место, выкопайте лунку диаметром в полтора-два раза шире и глубже, нежели корневая система вашего саженца. На дно лунки уложите слой дренажа в 20 см. Для защиты хвойного в зимний период следует использовать препарат Пуршат-О. Микробиоту заглубляют, но совсем немного – не больше 3 см. Посаженные кустики поливают и мульчируют опилками или торфом. Мульчирование не только позволит сохранить воздух в почве, но и убережет молодое растение от сорняков- их микробиота не любит. В дальнейшем, пока растение не окрепнет, стоит почаще его пропалывать. Высаживая несколько растений, соблюдайте расстояние. Если кусты будут расти в ряд, между ними должно быть не менее полуметра, а если вразброс – по метру. Не зря этот кустарник советуют сажать на возвышенности: растение не любит застоя воды. Поэтому слишком часто поливать его не нужно, просто поддерживайте оптимальную влажность. В засушливые периоды достаточно поливать кусты пару раз в неделю. Дождевание обязательно, как и для любых хвойников.

Микробиота хорошо реагирует на подкормки (быстрее расти вряд ли будет, но станет крепче и зеленее). Лучший вариант – раствор коровьего навоза. Он прекрасно усваивается кустарником именно в жидкой форме. Подойдет биогумус, компост.

С минеральными удобрениями нужно быть внимательнее. В частности, азотистые удобрения не нужны, они провоцируют пожелтение хвои. А вот магний будет полезен, особенно для внекорневых подкормок (опрыскивание). Почву вокруг кустарников нужно обязательно рыхлить, на 5-6 см глубиной у молодых растений и на 10-12 у взрослых. Зиму микробиота переносит хорошо: в местах, откуда она родом, бывают морозы до -40°С. Молодые растения на зиму следует укрывать. У взрослых – следить, чтобы ветки не сильно гнулись под весом снега, иначе они просто могут сломаться. Микробиота за зиму меняет цвет, становится буро-коричневой, но это нормально. Как только сойдет снег и на улице потеплеет, веточки снова станут зелеными.

Для ландшафтного дизайна

Микробиота нравится дизайнерам за яркость цвета, широкий охват территории и неприхотливость. Она отлично сочетается как с другими хвойными, так и с лиственными деревьями. Лучшие варианты посадки: • Альпийская горка. Растение уютно чувствует себя вреди камней и визуально соответствует стилистике. • Гравийная клумба. Такой вариант выглядит ухоженно, а гравий выполняет роль мульчи для кустарника. • Бордюрная посадка: кусты, высаженные вдоль дорожек, отлично зонируют пространство. Расширяйте свои границы, высаживая на участке небанальные растения, тем более, что при грамотном уходе расти они будут десятки лет!

Микробиота перекрестнопарная в Экспозиции экосистем

В композициях экосистем микробиота высажена крупной группой во фрагменте, посвященном Дальнему Востоку. В естественных условиях кустарник встречается на южных и западных склонах Сихотэ-Алиня. Растет выше границы леса, на каменистых почвах в сообществах с кедровым стлаником, на опушках, в легкой тени деревьев. Это растение — реликт, переживший ледниковый период и открытый для науки сравнительно недавно, в 1921 году, дальневосточным ботаником И.К. Шишкиным.

Микробиота — густо разветвленный вечнозеленый кустарник до 1 метра высотой со стелющимися и приподнимающимися изящными тонкими ветвями. Ветви покрыты чешуйчатой темно-зеленой мягкой хвоей, заметно меняющей окраску на оливково-коричневую в зимний период. Хвоя плотно прижата к побегам, при растирании имеет сильный запах. Внешне растение очень декоративно, напоминает стелющиеся формы туи. Корневая система состоит из тонких корней, которые густо ветвятся. Микробиота долговечна, живет до 100 лет.

The microbiota (or Siberian carpet cypress) is planted in the Ecosystem compositions as a large group of trees in the Far East zone. This shrub is naturally found on the southern and western slopes of the Sikhote-Alin. It grows above the forest border on rocky soils in communities with the Siberian dwarf pine, and along forest edges in the light shade of trees. This plant is a relic which survived the ice age and was only discovered in 1921 by Far-Eastern botanist I. K. Shishkin.

Microbiota decussata is a prostrate evergreen shrub up to 1 m tall with creeping and graceful rising thin branches. The branches are covered with scaly dark-green soft needles, which noticeably change their colour to olive-brown in the winter. The plant is distinctive for its highly decorative value. It resembles the creeping species of thuja. The root system consists of thin roots that are densely branched. The Microbiota is a durable tree that lives up to 100 years.

在生态系统的组成中，胡柏植物群种植在远东地区部分。在自然条件下，这种灌木在锡霍特山脉的南部和西部斜坡上生长。它生长在森林边界，有偃松群落的石质土壤，森林边缘和树荫下。这种植物是一种在冰河时代幸存下来的残遗种，在1921年被远东植物学家I.C.希什金发现。

胡柏是密集分枝的常绿灌木，高达1米，有着向上四散延伸的细枝条。树枝上覆盖着鳞片状的深绿色软针叶，冬季颜色明显变为橄榄棕色。针叶紧紧地压在枝条上，被磨碎会散发强烈气味。外观上，这种植物非常具有装饰性，让人想起蔓生的崖柏。根系由密集分枝的树根组成。胡柏生命力顽强，寿命长达100年。

Микробиота перекрестнопарная: реликт, переживший ледниковый период

Что за зверь такой — микробиота? Перевод с латыни Microbiota decussatа – микробиота перекрестнопарная – большей ясности для незнакомых с ней граждан не приносит. «Что-то про микробов», – решат одни. «Крошечная биота», – подумают другие, более продвинутые в ботанике, и окажутся ближе к истине. Биота, или более знакомое название — Туя восточная, – дальняя родня микробиоте, обе они входят в трибу Туевиковые одного семейства Кипарисовых. Внешне побеги микробиоты действительно похожи на тую, они так же могут буреть в зимний период, однако, не так сильно сплюснуты. Кроме того, она имеет редкую для туй стланиковую форму кроны.

Микробиота — реликт, переживший ледниковый период
 

Микробиота – реликт, переживший ледниковый период, открытый для науки сравнительно недавно – в 1921 г., во время Сучанской ботанической экспедиции — дальневосточным ботаником И.К.Шишкиным. Ее ботаническое описание было дано академиком В. Л.Комаровым в 1923 году, но поскольку проводилось по гербарным сборам из мест произрастания, долгое время это хвойное считалось двудомным, и только в 1963 году в научных трудах была указана однодомность. 

Микробиота образует заросли на каменистых россыпях
Микробиота – эндем Сихотэ-Алиня. Вероятно, это хвойное возникло и развивалось в один из не очень теплых и относительно сухих периодов геологической истории Восточной Азии.

В природе микробиота растет в основном в поясах кедрового стланика и высокогорных хвойных лесов, реже на гольцах. В поясе хвойных лесов она широко распространена по каменистым россыпям, где образует заросли. На нижней границе распространения (на высоте около 300 м над уровнем моря) встречается вдоль горных ключей. В лучших местах обитания образует монодоминантные сообщества площадью 1-3 га, в основном располагаясь на южных склонах.

В некоторых местах наблюдают смыкание ареалов микробиоты и кедрового стланика, но группировки их не смешиваются. По своей природе микробиота не является высокогорным, альпийским растением и растет в Сихотэ-Алине на гольцах лишь из-за небольшого количества конкурентов.

 

Микробиота образует крошечные шишечки 4-4,5 мм длиной, с одним  бескрылым семенем. Опыление происходит в мае-июне, семена созревают в августе-сентябре. В местах обитания на каждый гектар почвы ежегодно поступает около полумиллиона ее зачатков, поэтому почвенный запас семян составляет несколько миллионов на 1 га, но бескрылые семена не способны распространяться на значительные расстояния. Всходы наблюдаются только на собственных гарях. Своими глазами видела от 3 до 10 молодых растений на 10 кв.м. (в литературе описываются участки с 80-100 экземплярами подроста на 1 кв.м).
Первые 6-12 лет молодые растения резко отличаются от взрослых игольчатой хвоей. Подрост в возрасте 10-20 лет может иметь всего 18-22 см в высоту. Взрослые растения образуют побеги-плети, раскидывающиеся на 2-3,5 м, то есть, одно растение может иметь крону до 4-5 м в диаметре и до 1,2 м в высоту.

Максимальная длина ветвей микробиоты достигает 6-7 м при диаметре стволика 16 см. Иногда наблюдается образование придаточных корней на ветвях, прижатых к почве. Растет медленно, хотя среднегодовой прирост бывает 10,5-17 см. Возраст отдельных особей достигает 150–230 лет.

Микробиота светолюбива и почти не страдает от метеорологических факторов и вредителей. В природных условиях она устойчива в суровые зимы и хорошо переносит дневные перегревы летом, когда камни (среди зарослей микробиоты) нагреваются до +60 градусов. Часто обеспечивается водой только за счет конденсации влаги на камнях. 

Микробиота очень устойчива к неблагоприятным факторам

Строение стланиковых кустарников микробиоты таково, что создается многослойное покрытие из живых и отмерших ветвей, поэтому испарение очень замедленное, и почва, покрытая распростертым над ней кустарником, постоянно находится в достаточно увлажненном состоянии. 
 

Растение представляет большой научный интерес и ценно для озеленения, особенно скальных участков. Охраняется в заповедниках — Сихотэ-Алиньском и Лазовском им. Л.К. Капланова, в других точках распространения нуждается в охране и организации заказников.

Пожары в зарослях этого уникального растения происходят, видимо, не столько от молний, сколько по вине посетителей этих мест. Микробиота серьезно страдает от огня, поскольку живые ветви содержат горючие смолистые вещества, и вместе с множеством сухих отмерших ветвей могут мгновенно вспыхивать в любое время года от малейшей искры. После пожаров вид восстанавливается лишь на ¼ площади гарей.
 

Микробиота присутствует в коллекциях ботанических садов с 30-40-х годов (ЛОСС, Киев, Ташкент), в настоящее время – более чем в 20 дендрологических коллекциях России, однако в Москве в продаже (для любителей) растение появилось только в последние 10 лет. Наш реликт и эндемик стал модной фишкой зарубежных питомников, что очень досадно. Вероятно, все дело в размножении: семенами почти невозможно, их трудно достать и для проращивания могут потребоваться специфические условия; черенкование в среднем дает невысокие результаты (30%), хотя весьма значительные успехи получены в Ставрополе (до 76 %) и в ботаническом саду Владивостока (100%).

При культивировании в средней полосе России микробиота нуждается в легком укрытии в зимний период, поскольку может пострадать от яркого солнца в период снеготаяния.

 
Галина Новицкая,
Ботанический сад МГУ   

Если вас интересуют хвойные растения, вам могут понравиться статьи:

Микробиота

Микробиота – Microbiota
Сем. Кипарисовые

Это хвойное растение – предмет национальной гордости великороссов! Микробиота – наш эндемик. Т.е. в природе нигде, кроме нашей страны, не встречается! И, тем не менее, в наших садах мы видим этот хвойный кустарник в основном польского происхождения. Быстро сработал Союз Польских Питомников и насытил не только Россию, но ещё и половину Европы нашим «эксклюзивом».

Микробиота растёт на Дальнем Востоке России, образуя порой обширные заросли невысоких, до метра кустарников со слегка свисающими ветвями, отдалённо напоминающие можжевеловые. Гармонично выглядит, посаженная среди камней и других хвойных растений. Особенностью (и весьма полезной, нужной для нас) микробиоты является её способность расти в условиях очень низкой освещённости. По сути, она может расти там, где ни одно хвойное расти не сможет. А она растёт и хорошеет! Это, кстати, не означает, что микробиота – тенелюбивое растение. Нет! Она замечательно растёт и на солнце! Вот такой очень пластичный вид. Так как это житель в основном предгорий, покрытых лиственными кустарниками и широколиственными деревьями, то почва, соответственно, там достаточно плодородная. Поэтому держать микробиоту на «голодном пайке» не стоит. По весне не помешает подкормка комплексным минеральным удобрением. В половинной дозе, если ориентироваться на норму для декоративных многолетников. Микробиота положительно относится к повышенной влажности воздуха. Поэтому вечернее или утреннее дождевание благотворно сказывается на ее развитии.

Как и многие стелящиеся хвойные, она достаточно легко черенкуется. Для этого нужно взять черенок « с пяткой» (кусочком стебля) и воткнуть его в песок под банку в холодный парник. Развитие идёт медленно. Но зато через несколько лет можно получить некоторое количество однородного посадочного материала.

Микробиота устойчива к весеннему иссушению. Даже если она посажена на солнечном месте. Но все же лучше её посадить в теневой садик, рядом с хостами, баданами, подофилами и бузульниками. Такое сочетание, как мне кажется, будет наиболее выигрышно! 

© Сады Северо-Запада.
Это экологический проект.
Помогите ему стать доступным каждому.
При цитировании помещайте активную ссылку
http://sadsevzap.ru

Растение микробиота перекрестнопарная с10 оптом

Грунт универсальный Огородник 60л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:259.90 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт универсальный Щедрая земля НЦС 60л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:9 391.20 ₽

Квант отгрузки:39 шт.

Грунт универсальный Огородник 9л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:262. 50 ₽

Квант отгрузки:5 шт.

Земляника садовая крупноплодная Априка Р9 Lav

Доступность товара: Скоро может закончиться

Стоимость за квант отгрузки:52.50 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт Садовая земля Огородник 60л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:259.90 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт для цветов Фаско Цветочный 50л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:278. 40 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт универсальный Огородник 40л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:183.40 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт для Хвойных Фаско 50л

Доступность товара: Скоро может закончиться

Стоимость за квант отгрузки:281.90 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт для органического земледелия Фаско с биогумусом 50л

Доступность товара: Скоро может закончиться

Стоимость за квант отгрузки:293.30 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт для Теплиц Фаско 40л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:244.60 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт универсальный Щедрая земля НЦС 40л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:6 754.80 ₽

Квант отгрузки:39 шт.

Грунт для клубники и земляники Фаско 25л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:160.50 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт универсальный Фаско 25л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:150.30 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт для цветов Фаско Цветочный 10 л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:343 ₽

Квант отгрузки:5 шт.

Удобрение сухое Фаско Карбамид минеральное 0,8кг

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:1 827.50 ₽

Квант отгрузки:25 шт.

Торф нейтрализованный Фаско прессованный 100л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:452.50 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт универсальный Фаско 50л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:271.60 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Корневин Инта Вир 50г

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:869 ₽

Квант отгрузки:5 шт.

Грунт для рассады Фаско Крепыш 10л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:390 ₽

Квант отгрузки:5 шт.

Удобрение сухое Фаско Суперфосфат минеральное гранулированное 1кг

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:3 420 ₽

Квант отгрузки:25 шт.

Грунт для рассады Фаско Крепыш 25л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:180.40 ₽

Квант отгрузки:1 шт.

Грунт для цветов Фаско Цветочный 5л

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:214.50 ₽

Квант отгрузки:5 шт.

Удобрение сухое Фаско 5М минеральное для Газона гранулированное 3 кг

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:1 578 ₽

Квант отгрузки:10 шт.

Медный купорос Фаско 100гр

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:2 740 ₽

Квант отгрузки:50 шт.

Удобрение сухое Террасол минеральное для Газона весна-лето с микроэлементами 5 кг

Доступность товара: Достаточно для заказа

Стоимость за квант отгрузки:1 710 ₽

Квант отгрузки:5 шт.

Обзор микробиома растений: экология, функции и новые тенденции в применении микробов

Стефан Компант работает ученым по взаимодействию растений и микробов в Австрийском технологическом институте AIT. Он получил докторскую степень в Университете Реймса-Шампань-Арденны и степень доктора экологии в Университете Бордо во Франции. Стефан Компан был адъюнкт-профессором микробиологии в Национальном политехническом институте Тулузы во Франции, прежде чем он присоединился к AIT.Он является одним из ведущих специалистов по микробной экологии эндофитных бактерий, взаимодействующих с растениями, по микроскопии взаимодействия растений с микробами в целом и по биоконтролю болезней растений.

Абдул Самад в настоящее время работает младшим научным сотрудником в Австрийском технологическом институте AIT. Он получил докторскую степень по микробиологии в Университете природных ресурсов и прикладных наук о жизни, Вена, Австрия. Его докторская степень была в основном сосредоточена на структурных и функциональных характеристиках бактериальных сообществ, связанных с растениями, и на биологическом контроле над сорняками.В настоящее время он работает над разработкой биоудобрений, уделяя особое внимание бактериям, растворяющим фосфор и железо. Он имеет большой опыт в области взаимодействия растений и микробов, почвоведения, анализа микробных сообществ и анализа последовательностей NGS.

Ханна Фаист , младший научный сотрудник Австрийского технологического института AIT, является частью европейского проекта Horizon 2020 SolACE (Решения для улучшения агроэкосистемы и эффективности сельскохозяйственных культур с точки зрения использования воды и питательных веществ). Недавно Ханна Фейст раскрыла роль бактериального сообщества в культурах, подверженных комбинированным стрессам и различным методам управления.Ранее в Университете Вюрцбурга она исследовала желчную болезнь растений, занесенную патогенными агробактериями. Это включало характеристику гена и его влияние на липидом коронных галлов и бактериальное сообщество больных и здоровых виноградных лоз. Сочетая вычислительные и молекулярно-биологические навыки, ее исследования сосредоточены на взаимодействии бактерий и растений.

Анджела Сессич возглавляет отдел биоресурсов австрийского технологического института AIT.Она изучала биохимию в Технологическом университете в Граце, имеет докторскую степень по микробиологии Университета Вагенингена, Нидерланды, а также получила хабилитат в Венском университете природных ресурсов и наук о жизни. Она была пионером в создании микробиомов, связанных с растениями, особенно в эндосфере, и она заинтересована в понимании взаимодействия между растениями, микробиомами и окружающей средой, а также в разработке приложений. Ее группа исследует разнообразие и функционирование микробиоты растений, применяя ряд молекулярных подходов, режимы взаимодействия между растениями и модельными бактериями, колонизирующее поведение эндофитов, а также различные прикладные технологии для приложений биоконтроля и улучшения сельскохозяйственных культур.

© 2019 Авторы. Опубликовано Elsevier B.V. от имени Каирского университета.

Информация о русском кипарисовике – узнайте о выращивании кустарников русского кипарисовика

Русский кипарисовик может быть самым вечнозеленым почвопокровным растением. Также называемые русскими туи из-за плоской чешуевидной листвы, эти кустарники одновременно привлекательны и прочны. Это раскидистое вечнозеленое почвопокровное растение в диком виде растет в горах на юге Сибири, над линией деревьев, и его еще называют сибирским кипарисовиком.Читайте дальше, чтобы узнать больше о выращивании русского кипарисовика и уходе за русским кипарисовиком.

Русский кипарис Информация

Туи русские / кипарисовики русские ( Microbiota decussata ) – карликовые вечнозеленые хвойные породы. Они вырастают от 8 до 12 дюймов (от 20 до 30 см) в высоту, с раскидистыми кончиками, грациозно покачивающимися на ветру. Один куст может достигать 3,7 м в ширину.

Кусты растут и разрастаются двумя волнами листвы. Оригинальные стебли в центре молодого растения со временем становятся длиннее.Они обеспечивают растению ширину, но это вторая волна стеблей, растущих из центра, которая обеспечивает многоуровневую высоту.

Особенно привлекательна листва кипарисовика русского. Он плоский и перистый, растет ветвистыми ветвями, как туи, придавая кусту нежный вид с мягкой текстурой. Однако листва на самом деле острая на ощупь и очень прочная. Осенью появляются маленькие круглые шишки с семенами.

Хвоя на растении во время вегетации ярко-зеленого цвета.По мере приближения прохладной погоды они становятся более темно-зелеными, а зимой – коричневыми. Некоторые садовники находят бронзово-фиолетовый оттенок привлекательным, в то время как другим кажется, что кусты выглядят мертвыми.

Кусты кипарисовика русского – интересная альтернатива растениям можжевельника для почвопокровных работ на склонах, берегах или в озеленении альпинариев. От можжевельника его отличает осенняя окраска и теневыносливость.

Выращивание кипарисовика русского

Вы лучше всего будете выращивать русский кипарис в климате с прохладным летом, например, в U.S. Зоны устойчивости растений с 3 по 7 Министерства сельского хозяйства. У медлительных кустарников требуется время, чтобы укорениться.

Эти вечнозеленые растения хорошо растут на солнце или в полутени и предпочитают последнее в более жарких местах. Они хорошо переносят и растут на самых разных почвах, включая сухую, но лучше всего растут во влажной земле. С другой стороны, установите это почвопокровное растение в тех местах, где почва хорошо дренируется. Русский кипарисовик плохо переносит стоячую воду.

Ветер не повреждает русских туи, поэтому не беспокойтесь о ее посадке в защищенном месте.Точно так же он сопротивляется ненасытным аппетитам оленей.

Русские туи в основном не требуют ухода, и у этого вида нет проблем с вредителями или болезнями. В засушливые сезоны требуется умеренный полив, но в противном случае уход за кипарисовиком минимален после того, как кусты укоренились.

Microbiota decussata – Управление питомником

Трудно поверить, что сезон отпусков снова опустился на нас. На многих предприятиях ноябрь и декабрь – это месяцы, отведенные для того, чтобы отметить важные вехи и достижения года, а также отметить и поблагодарить сотрудников за их вклад.К сожалению, на некоторых рабочих местах наряду с праздничным настроением возрастает юридическая ответственность, связанная с употреблением алкоголя, притеснениями и травмами. Как можно избежать этих праздничных головных болей? Прочтите несколько практических советов, как минимизировать риск и при этом получать удовольствие.

От веселья к судьбе

Когда дело доходит до вечеринок, выбор безграничен. Некоторые компании отмечают праздники с помощью тщательно продуманных встреч в красивых ресторанах или других местах и ​​приглашают друзей сотрудников и членов семьи.Другие устраивают скромные обеды для сотрудников, пикники или посиделки в доме начальника. Независимо от типа праздника или места, вечеринки, как известно, повышают моральный дух, укрепляют командный дух и помогают создать больше семейного ощущения на работе.

Часто алкоголь подается на корпоративных вечеринках. Когда это так, работодатели часто полагаются на то, что сотрудники проявляют «здравый смысл» при употреблении алкоголя. Однако все мы знаем, что здравый смысл и алкоголь не всегда идут рука об руку. Для некоторых сотрудников сочетание праздничных мероприятий и алкоголя может скрыть границы допустимого поведения на работе и здравого смысла.Достаточно сказать, что многие работники рассматривают корпоративные вечеринки с алкоголем как время, когда общие правила надлежащего поведения не действуют.

Учтите: сотрудник выпивает на вечеринке, уезжает и попадает в автомобильную аварию, в результате которой происходят травмы. Можно ли привлечь к ответственности вас (работодателя), даже если сотрудник не управляет транспортным средством компании? А как насчет менеджера, который на вечеринке немного напивается и начинает флиртовать, трогать или делать предложение сотруднику? Может ли работодатель быть привлечен к ответственности за сексуальные домогательства, происшедшие на добровольном мероприятии, проводившемся вне территории компании и в нерабочее время? Эти сценарии представляют собой реальные риски и потенциальные обязательства, которые следует учитывать, особенно в праздничные дни.

Неудивительно, что федеральная комиссия по равным возможностям при трудоустройстве (EEOC) определила «рабочую культуру, которая терпит или поощряет потребление алкоголя» и «рабочая сила с большим количеством молодых работников» как два из десятка факторов риска рабочей среды, которые увеличивают вероятность преследований. . Согласно EEOC, «наличие одного или нескольких факторов риска предполагает, что может быть благодатная почва для притеснения».

Это печальная реальность, но корпоративные вечеринки могут стать обузой для работодателей.Возможно, именно поэтому многие компании отказались от корпоративных праздников вслед за движением #MeToo.

Минимизация риска

Итак, как можно ограничить ответственность за праздничные вечеринки и при этом весело провести время? Для начала подумайте о полном отказе от алкоголя. Я знаю, что это непопулярный вариант, но само собой разумеется, что, если вы откажетесь от алкоголя, вы устраните основную причину большинства обязательств, связанных с праздничными вечеринками.

Если вы решите подавать алкоголь, вот несколько советов, которые помогут снизить риск.

Не делайте алкоголь центральным элементом праздника.

Определите цель празднования, связанную с работой, и запланируйте мероприятие, включив в него рассказы о сотрудниках, основные моменты прошлого года, мотивационную беседу о предстоящем году или другие темы, связанные с бизнесом.

Назначьте одного или нескольких менеджеров для наблюдения за сотрудниками. Назначенные менеджеры не должны пить на мероприятии и должны внимательно следить за сотрудниками, которые пьют. Это включает в себя, помимо прочего, обеспечение того, чтобы сотрудники не злоупотребляли алкоголем, не становились излишне дружелюбными с коллегами или другими людьми, вели поведение, опасное для них самих или других, или не садились за руль после чрезмерного употребления алкоголя.Назначенные менеджеры должны иметь здравый смысл и знать о признаках интоксикации. Они также должны быть готовы и способны бороться с ненадлежащим поведением. Действительно сложная задача.

Выберите подходящее место.

Если вы решите устроить вечеринку в местном пабе или ночном клубе с сомнительной репутацией, вы можете напроситься на неприятности.

Ограничьте количество напитков на человека и / или время подачи алкоголя.

Рассмотрите возможность использования билетной системы, чтобы ограничить количество напитков на человека.

Откажитесь от спиртных напитков и / или откажитесь от спиртных напитков перед ужином. Подача только пива и вина и / или прекращение подачи спиртных напитков перед ужином может помочь свести к минимуму вероятность возникновения проблем.

Воспользуйтесь услугами профессионального бармена.

Сообщите бармену, что компания ожидает, что он или она откажут в обслуживании любому сотруднику, находящемуся в явном состоянии алкогольного опьянения. Организуйте уведомление ответственного менеджера, если сотрудник или посетитель находится в состоянии алкогольного опьянения.

Убедитесь, что еда подана.

Выбирайте сытную пищу, которая дольше остается в желудке, чтобы помочь усвоению алкоголя.

Организуйте транспорт для всех, чей уровень алкоголя вызывает сомнения.

Будем надеяться, что после принятия вышеуказанных мер в этом не будет необходимости, но наличие такой опции будет разумным.

Чтобы ограничить другие обязательства, примите во внимание эти предложения.

Перед вечеринкой проинформируйте сотрудников о том, что политика компании в отношении сексуальных домогательств остается в силе на всех мероприятиях, спонсируемых работой.Напомните им об их обязанности сообщать о случаях домогательств, с которыми они сталкиваются или становятся свидетелями.

Убедитесь, что ваши менеджеры понимают, что они задают тон надлежащему поведению, даже когда они участвуют в спонсируемых компанией функциях в нерабочее время.

Продвигайте семейные праздники, запланированные на послеобеденное время, или приглашайте супругов и близких на вечерние вечеринки, чтобы ограничить возможность плохого поведения.

Категорически не поощряйте дарить неуместные или непристойные подарки на праздничных мероприятиях.

Не требует присутствия на вечеринке; убедитесь, что сотрудники знают, что это добровольно. Если вам требуется присутствие, вы можете нести ответственность за компенсацию работникам, если работник получит травму на мероприятии.

Никс омела! Это увеличивает соблазн плохого поведения.

Тщательно расследуйте все заявления о домогательствах, поданные сотрудниками после вечеринок, и незамедлительно принимайте меры в отношении любых сотрудников, которые нарушают политику преследований на офисных мероприятиях.

Проявив немного предусмотрительности, планирования и принятия мудрых решений, вы сможете устранить многие риски и потенциально разрушительные обязательства, связанные с праздничными вечеринками.Если вы начальник, я призываю вас остановиться и дважды подумать над этим. В конце концов, это время года для радости, а не для горя. NM

Примечание: информация в этой статье не является юридической консультацией. Для получения юридической консультации читателям следует проконсультироваться с юристом.

Джин Сиврайт, CMC, является президентом Seawright & Associates, консалтинговой фирмы по управлению, расположенной в Винтер-Парке, Флорида. [email protected]

Русский кипарисовик (Microbiota decussata) в Инвер-Гроув-Хайтс, Миннесота (Миннесота), в Гертенсе

15 дюймов

4 фута

2a

Русские туи

Кипарисовик русский с зеленой листвой.Чешуевидные листья осенью становятся медно-бронзовыми. Ни цветы, ни плоды не имеют декоративного значения.

Кипарисовик русский – многоствольный вечнозеленый кустарник, прилегающий к земле. Его относительно тонкая текстура отличает его от других ландшафтных растений с менее изысканной листвой.

Этот куст требует периодического ухода и ухода, и его лучше всего обрезать в конце зимы, когда исчезнет угроза сильного холода.Существенных отрицательных характеристик не имеет.

Русский кипарис рекомендуется для следующих ландшафтных приложений;

• Массовый посев
• Обычное использование в саду
• Почвопокровные

Русский Кипарисовик вырастет до 15 дюймов в высоту и в ширину 4 фута. Он имеет тенденцию заполняться прямо до земли и, следовательно, не обязательно требует передних фасонных растений.Он растет медленно, и в идеальных условиях можно ожидать, что он проживет около 30 лет.

Этот кустарник хорошо себя чувствует как на солнце, так и в тени. Он хорошо адаптируется как к сухим, так и к влажным условиям выращивания, но не переносит стоячей воды. Это не зависит от типа почвы или pH. Он в некоторой степени толерантен к городскому загрязнению, и его можно будет посадить в относительно защищенном месте. Подумайте о применении толстой мульчи вокруг корневой зоны зимой, чтобы защитить ее в открытых местах или в более холодном микроклимате.Этот вид не родом из Северной Америки.

№2 контейнер – 29,99 $
Контейнер №5 – 42,99 $
* Размеры и наличие могут быть изменены. Пожалуйста, сверьтесь с store для конкретных деталей.

границ | Растения и связанная с ними почвенная микробиота совместно подавляют паразитических нематод растений

Введение

Почвы, подавляющие болезни, являются ярким прототипом опосредованной микробами защиты растений от патогенной инфекции.В целом, подавляющие почвы – это почвы, в которых переносимые через почву патогены и паразиты не закрепляются и не сохраняются, не вызывают, а вызывают ограниченное заболевание или не вызывают его вообще, или создают и вызывают начало заболевания до того, как оно стихнет (Baker and Cook, 1974; Weller et al. др., 2002). Напротив, сельскохозяйственные почвы, в которых патогены и паразиты заражают растения и вызывают заболевания, называются несупрессивными или благоприятными почвами (Weller et al., 2002; Garbeva et al., 2004). По определению, общая подавляющая способность почвы, типичное воплощение совокупной конкурентной деятельности почвенного микробиома, должна действовать против широкого спектра заболеваний, передаваемых через почву (Cook and Baker, 1983; Borneman and Becker, 2007).Эти почвы работают по принципу «семена, корма и сорняки», так как это может быть инициировано добавлением органических веществ в почву или присутствием семян и корневых выделений (семян), что приводит к поглощению питательных веществ. разнообразными микроорганизмами (корма) и, следовательно, ограничением распространения патогенов и паразитов (сорняки). Таким образом, общая подавляющая способность почвы снижается при пропаривании почвы, но не может быть перенесена небольшими количествами подавляющей почвы на благоприятную почву (Cook and Baker, 1983; Weller et al., 2002). С другой стороны, специфическая подавляющая способность почвы обычно индуцируется в полевых почвах во время монокультуры сельскохозяйственных культур после вспышки болезни. Он основан на антагонистической активности специально обогащенных микробных консорциумов, которые нарушают жизненный цикл растительных патогенов или паразитов (Raaijmakers and Mazzola, 2016). Специфическая подавляющая способность почвы может быть устранена стерилизацией почвы и обработкой биоцидами и может быть перенесена на благоприятную почву с небольшим количеством подавляющей почвы (0,1–10%) (Yin et al., 2003a; Борнеман и Беккер, 2007). Критерий переносимости подразумевает, что перенесенные микробы-антагонисты могут в достаточной степени размножаться в благоприятной почве для достижения подавляющей плотности. Это зависит от взаимодействия с почвенной биотой, корнями или специализированных антагонистов от плотности патогена. Таким образом, различие между общей и специфической подавляющей способностью почвы может быть связано скорее с разнообразием антагонистов, чем с механизмами подавления.

Сообщалось о почвах со специфической подавляющей способностью к нематодам, паразитирующим на растениях (PPN), из различных географических мест по всему миру.Важно отметить, что жизненный цикл PPN отличается от жизненного цикла патогенных грибов и бактерий, и были охарактеризованы различные микробы, которые охотятся и паразитируют на разных стадиях нематод (Li et al., 2015). Следовательно, большинство исследований были в основном сосредоточены на выявлении микробов, которые могут напрямую убивать PPN, в то время как опосредованное растениями подавление нематод микробами часто игнорировалось. В почвенных системах нематофаги и бактерии используют различные стратегии для атаки PPN, например, грибы, улавливающие нематоды, образуют липкие ловушки на гифах, эндопаразитические грибы и бактерии используют споры, грибы, паразитирующие на яйцах и самках, используют кончики гиф, а некоторые грибы и бактерии производят токсины для предотвращения вторжения нематод в корни растений (рис. 1).В последнее время с использованием технологий нового поколения вышло на передний план несколько исследований, показывающих роль микробиоты почвы и корней, которые нарушают работу PPN. Таким образом, подробное понимание микробиома, связанного с почвой, корнями растений и отдельными этапами жизни PPN, может позволить нам создать (синтетические) основные микробные консорциумы, которые могут выступать в качестве устойчивой альтернативы для борьбы с болезнями нематод и повышения урожайности сельскохозяйственных культур. Здесь мы рассмотрим исследования, подчеркивающие вклад микробов в подавление нематод в почвах, подавляющих болезни, с использованием культурально-зависимых и культурально-независимых методов.Кроме того, мы подчеркнем важность микробиоты, связанной с корнями, во взаимодействиях растений и нематод. Наконец, мы затронем некоторые важные вопросы о роли корневых экссудатов в инфекции нематод и их влиянии на поверхностную оболочку нематод (SC), которая влияет на взаимодействие нематод и микробов в почве. Этот обзор даст представление о взаимодействиях растений, нематод и микробов в подавляющих почвах.

Рисунок 1. Микробные антагонисты нематод, паразитирующих на растениях, и механизмы их антагонизма.

История почв, подавляющих нематод

Хронологические записи почв, подавляющих нематоды, достоверно показывают прогресс, достигнутый в понимании взаимодействия нематод и микробов. Об уменьшении популяций PPN в полевых почвах впервые сообщил в 1962 году Коллингвуд для цистовой нематоды Heterodera avenae в Соединенном Королевстве при интенсивном выращивании зерновых-хозяев (Collingwood, 1962; Kerry, 1982). С тех пор сообщалось о подавляющих почвах для нескольких видов нематод, включая H.avenae в Соединенном Королевстве (Gair et al., 1969; Williams, 1969; Kerry, 1975), Heterodera schachtii в Нидерландах, Соединенном Королевстве и США (Heijbroek, 1983; Crump and Kerry, 1987; Westphal and Becker, , 1999), Globodera rostochiensis в Германии (Roessner, 1987), Globodera pallida в Великобритании и Германии (Crump and Flynn, 1995; Eberlein et al., 2016), Heterodera glycines в США и Китай (Chen et al., 1996b; Sun, Liu, 2000; Hamid et al., 2017; Hussain et al., 2018), нематода ложного корневого узла Nacobbus aberrans в Мексике (Zuckerman et al., 1989), нематода корневого узла Meloidogyne spp. в Мексике, США, Испании и Германии (Bird and Brisbane, 1988; Zuckerman et al., 1989; Chen et al., 1994b; Pyrowolakis et al., 2002; Bent et al., 2008; Adam et al., 2014b; Giné et al., 2016) и кольцевой нематоды Mesocriconema xenoplax в США (Kluepfel et al., 1993, 2002).

Общее и специфическое подавление почвенных патогенов и паразитов чаще всего имеет микробиологическое происхождение.В 1960-х годах внесение формалина было единственным известным фактором снижения репрессивности почвы против H. avenae на сельскохозяйственных полях (Williams, 1969). Было высказано предположение, что применение формалина подавляло паразитические грибы Nematophthora gynophila и Pochonia chlamydosporia и, таким образом, приводило к увеличению плотности населения H. avenae (Kerry et al., 1980; Kerry, 1988). Позже в нескольких исследованиях было продемонстрировано участие микробов в подавлении почвенного воздействия путем автоклавирования или нагревания почвы (Bird and Brisbane, 1988; Zuckerman et al., 1989; Kluepfel et al., 1993; Чен и др., 1996b; Weibelzahl-Fulton et al., 1996; Вестфаль и Беккер, 1999; Сунь и Лю, 2000; Бент и др., 2008; Адам и др., 2014b; Eberlein et al., 2016; Giné et al., 2016; Хамид и др., 2017; Bhuiyan et al., 2018), путем применения биоцидов (Kerry et al., 1980; Crump and Kerry, 1987; Westphal and Becker, 1999; Sun and Liu, 2000; Westphal and Becker, 2001; Pyrowolakis et al., 2002; Yin et al., 2003a, b; Bent et al., 2008; Song et al., 2017), а также путем пересадки почвы (Mankau, 1975; Stirling, Kerry, 1983; Kluepfel et al., 1993; Вестфаль и Беккер, 2000; Сунь и Лю, 2000; Инь и др., 2003а, б; Чен, 2007; Бент и др., 2008). Примечательно, что супрессивность почвы также передавалась суспензиями яиц нематоды корневых узлов Meloidogyne incognita (Orion et al., 2001) и цистами нематоды цист сахарной свеклы H. schachtii (Westphal and Becker). , 2001). Были охарактеризованы некоторые почвы со специфической подавляющей способностью и предложены основные микробные механизмы, включая паразитизм и антибиоз.Роль паразитизма в почвах, подавляющих нематод, широко изучалась для нематод корневых узлов (Mankau, 1975), нематод-цист злаков (Stirling and Kerry, 1983), нематод-цист сахарной свеклы (Olatinwo et al., 2006b; Becker et al. ., 2013) и нематоды цист сои (Chen, 2007). Антибиоз – важный механизм биоконтроля, при котором антагонист продуцирует метаболиты, такие как литические ферменты, токсины, антибиотики или летучие соединения, которые потенциально препятствуют проникновению патогенов. В отличие от существенного увеличения начальной концентрации паразитов для успешного контроля над нематодами, было отмечено, что подавление нематод некоторыми ризобактериями с использованием различных способов действия, включая антибиоз, может быть достигнуто при более низкой микробной плотности (Kluepfel et al., 1993). Так было с кольцевыми нематодами ( M. xenoplax ) – подавляющими почвами, где Pseudomonas sp. Было обнаружено, что продуцирование салициловой кислоты резко изменяет развитие яиц и участвует в ингибировании вылупления яиц (Kluepfel et al., 2002).

Все больше и больше исследований почвенных микроорганизмов, связанных с уменьшением количества нематод, раскрывают ряд новых видов микробов с антагонистическим потенциалом против PPN. В следующих строках мы рассмотрим бактерии и грибы, которые были либо изолированы от больных или мертвых нематод, либо были идентифицированы в почвах, подавляющих нематод, с помощью секвенирования следующего поколения.Будут сравниваться и обсуждаться культурозависимые и независимые от культуры подходы к определению антагонистов нематод.

Культурально-зависимые исследования микробиоты в почвах, подавляющих нематоды

Поскольку специфическая подавляющая способность почвы определяется активностью определенных антагонистических видов микробов, которые являются основными виновниками снижения плотности популяции нематод, культивирование таких организмов на питательных средах является важным шагом для их крупномасштабного размножения и длительного использования в нематодах. контроль.Как обсуждается в следующем разделе, многие исследования, использующие независимые от культуры подходы, раскрыли большое разнообразие микробиома, связанного с PPN в подавляющих почвах. Однако было высказано предположение, что только 1% микроорганизмов в природе можно культивировать (Amann et al., 1995). Это значительно уменьшает спектр антагонистов нематод, которые могут производиться серийно. Более того, культивирование облигатных паразитов нематод представляет собой дополнительную проблему, поскольку для этого часто требуется присутствие нематод-хозяина.Антагонистические эффекты различных микроорганизмов были обнаружены в исследованиях in vitro, исследованиях биологии свободноживущих нематод (Huang et al., 2005; Rae et al., 2008), или они появились как побочные продукты исследований подавляющей способности почвы против другие возбудители и паразиты растений (Adam et al., 2014a). Тем не менее, все еще существует множество видов микробов, которые были изолированы от нематод в подавляющих почвах (Bird and Brisbane, 1988; Chen et al., 1996a; Weibelzahl-Fulton et al., 1996; Borneman et al., 2004; Борнеман и Беккер, 2007; Чен, 2007; Адам и др., 2014b; Eberlein et al., 2016; Giné et al., 2013, 2016). В этом обзоре мы сосредоточили внимание на микроорганизмах, связанных с наиболее важной группой PPN, сидячими эндопаразитами (корневыми узелками и кистозными нематодами). Мы отнесли эти микробы к двум разным группам: (1) виды микробов, связанные с подавлением миграционных стадий малоподвижных эндопаразитарных нематод, и (2) виды микробов, связанные с подавлением малоподвижных стадий малоподвижных эндопаразитарных нематод.

Виды микробов, ассоциированные с подавлением миграционных стадий малоподвижных эндопаразитарных нематод

Наиболее изученным микроорганизмом, связанным с миграционными стадиями PPN в супрессивной почве, является бактерия Pasteuria (Манкау, 1975). Облигатная природа Pasteuria spp. делает их перспективным кандидатом для биоконтроля PPN. Сообщалось, что несколько видов Pasteuria паразитируют на нематодах. Pasteuria Penetrans паразитирует Meloidogyne spp.(корневые нематоды), Pasteuria nishizawae паразитирует Globodera spp. и Heterodera spp. (цистовые нематоды), Pasteuria thornei паразитирует Pratylenchus spp. (нематоды, поражающие корни), и Pasteuria usgae паразитирует на Belonolaimus spp., жалящих нематод (Preston et al., 2003; Noel et al., 2005). Приставка Pasteuria spp. Эндоспоры кутикулы нематод – это первый шаг во время паразитизма.В случае P. Penetrans , паразитирующего на Meloidogyne , споры сначала прикрепляются к инфекционным молодым особям второй стадии (J2) в почве, а затем, когда J2 проникает в корни, бактерии образуют микроколонии внутри псевдоцеломы нематоды. В конце концов, развитие яиц у самок нарушается (Li et al., 2015). Однако в других PPN эндоспоры могут прорастать через кутикулу и завершать жизненный цикл бактерий с образованием новых эндоспор у молодых нематод (например,g., Pasteuria on H. avenae ) (Davies et al., 1990). Pasteuria spp. неоднократно выделялись из почв, которые проявляли подавляющую способность в отношении различных видов нематод (Stirling and Wachtel, 1980; Stirling and White, 1982; Bird and Brisbane, 1988; Chen et al., 1994b; Weibelzahl-Fulton et al., 1996; Stirling et al., 1996; Stirling et al. ., 2017; Bhuiyan et al., 2018). Однако присутствие эндоспор Pasteuria в почве не всегда гарантирует паразитизм нематод, а небольшое количество прикрепленных спор может не привести к инфицированию PPN.Например, Stirling et al. (2017) обнаружили Pasteuria spp. на 56% полей сахарного тростника, но только 5% наблюдаемых нематод имели прикрепленные споры. На одном поле Pasteuria sp. было предложено быть ответственным за подавление Meloidogyne javanica , но только в том случае, когда инокулированный J2 должен был пройти расстояние более 4 см, чтобы достичь корней. Низкий уровень паразитизма в некоторых случаях является результатом очень высокой специфичности нематод и бактерий (Chen and Dickson, 1998).Концентрация бактериальных эндоспор в почве и устойчивость антагонизма были проверены Bhuiyan et al. (2018). Было показано, что размножение M. javanica было снижено в зависимости от концентрации, а уровень паразитизма был очень высоким с 96% снижением воспроизводства через 6 месяцев после инокуляции до 81% снижения воспроизводства через 20 месяцев. месяцев после инокуляции. Среди других микробных антагонистов, выделенных из супрессивных почв, которые показали высокие антагонистические эффекты против PPN, Streptomyces costaricanus был эффективен против широкого круга видов нематод (Dicklow et al., 1993; Эснард и др., 1995). Грибок Hirsutella spp. было продемонстрировано, что они продуцируют конидии, которые прикрепляются к кутикуле J2 цистных нематод, а затем проникают, переваривают и убивают нематод до вторжения корней (Stirling and Kerry, 1983; Hussain et al., 2016; Wang et al., 2016a, b. ). Topalović et al. (2019) выделили несколько родов бактерий из кутикулы узловатой нематоды Meloidogyne hapla в почвах с разной степенью подавленности. Они были отнесены к Microbacterium , Sphingopyxis , Brevundimonas , Acinetobacter и Micrococcus .Хотя эти бактерии не являются облигатными паразитами PPN, они показали антагонистические эффекты против J2, увеличивая смертность, снижая подвижность или уменьшая инвазию J2 в корни. Один из штаммов уменьшал вывод J2 из яиц.

В то время как прямой антагонизм микробов к PPN в основном считался основным механизмом подавления почвы, в последнее время растение рассматривается как холобионт, связанный с его микробиомом (Hassani et al., 2018). Используя раздвоенные корневые системы томатов, Adam et al.(2014a) показали, что для изолятов Bacillus , хотя и выбранных в качестве потенциальных штаммов для биоконтроля на основании их способности продуцировать нематоцидные и фунгицидные соединения, основной механизм подавления узловатых нематод был не прямым, а опосредованным растениями. Микроорганизмы нацелены не только на подвижные стадии PPN в почве, но также могут колонизировать корни, паразитируя на малоподвижных стадиях эндопаразитических нематод, о чем говорится в следующих строках.

Виды микробов, ассоциированные с подавлением малоподвижных стадий эндопаразитарных нематод

Среди первых изолированных микроорганизмов, которые проявили паразитизм против малоподвижных стадий PPN, были грибы N.gynophila и P. chlamydosporia (ранее Verticillium chlamydosporium ), которые приводят к снижению численности цистовой нематоды H. avenae (Kerry, 1982; Stirling and Kerry, 1983). P. chlamydosporia – сапрофитный гриб в почве, ассоциация которого с яйцами нематод и цистами в почве является обычным явлением (Giné et al., 2016; Song et al., 2017; Hu et al., 2018, 2020). Подавление H. schachtii в калифорнийской почве было тщательно изучено, и перенос таких небольших количеств, как 0.Использование 1% этой почвы в благоприятной почве привело к значительному снижению воспроизводства нематод (Westphal and Becker, 2000). Подавление почвы коррелировало с высоким присутствием грибов Dactylella oviparasitica и Fusarium oxysporum в цистах и ​​яйцах нематод (Westphal and Becker, 2001). Однако участие F. oxysporum в подавлении нематод все еще является предположительным, поскольку в нескольких последующих исследованиях оно не привело к уменьшению количества нематод (Olatinwo et al., 2006а, б; Гао и др., 2008; Becker et al., 2013). Кроме того, Becker et al. (2013) указали, что, хотя D. oviparasitica был высокоэффективным при паразитизме яиц, жизнеспособные яйца по-прежнему оставались устойчивыми к этому грибку. Поскольку он также способен паразитировать на J2, они предложили J2 в качестве мишени при применении D. oviparasitica в качестве средства биоконтроля против цистных нематод. Паразитизм яиц некоторыми штаммами видов Pseudomonas и Bacillus , выделенных из супрессивных почв, также важно упомянуть в случае эктопаразитарной PPN (Westcott and Kluepfel, 1993; Kluepfel et al., 2002; Colagiero et al., 2017). Kluepfel et al. (2002) обнаружили несколько генов-кандидатов в изолированном штамме Pseudomonas , ответственных за токсичность яиц.

Консорциумы других грибов были также выделены из яиц и самок корневых узловатых или цистовых нематод в нескольких исследованиях, и для некоторых из них антагонистические эффекты были подтверждены в парниковых анализах (Marban-Mendoza et al., 1992; Chen et al., 1994a). , 1996a; Крамп, Флинн, 1995). Используя штаммы микробов, выделенные на стадиях заболевания нематод, были показаны различные механизмы противодействия нематодам, такие как паразитизм, выработка токсинов и ловушек или опосредованные растениями механизмы.Массовому производству антагонистов предшествует их изоляция, поэтому культуральный подход к изучению микробов, подавляющих нематод, имеет огромное значение. Однако идентификация микробов с использованием методов на основе ДНК дает более точное представление о микробных консорциумах, связанных с подавлением PPN, и следующие разделы охватывают исследования в этом аспекте.

Независимые от культуры исследования микробиоты, связанной с Ppn, в почвах, подавляющих нематоды

Хотя известно, что несколько потенциальных микробных антагонистов регулируют плотность популяций нематод в лабораторных и контролируемых тепличных условиях, большинство из них не смогли противодействовать PPN в полевых условиях в определенном географическом месте.Такое несоответствие микробов полному выражению своих антагонистических характеристик объясняется отсутствием их выживания в сложных микробных сообществах в почве или их неспособностью лучше колонизировать корни растений в различных условиях окружающей среды (Alabouvette et al., 2009). Кроме того, подавляющая способность почвы устанавливается из-за активности микробных консорциумов, а не только одного вида (Costa et al., 2012; Raaijmakers and Mazzola, 2016). Таким образом, несколько независимых от культивирования подходов, включая профилирование сообществ с помощью олигонуклеотидного фингерпринтинга генов рРНК (OFRG), денатурирующий градиентный гель-электрофорез (DGGE) и высокопроизводительное секвенирование генов таксономических маркеров, амплифицированных с помощью ПЦР, были использованы для расшифровки микробной когорты, способствующей заболеванию. подавление в сложных микробных сообществах, и сделать вывод о микробной антагонистической активности, действующей в почвах, подавляющих нематоды.

Микробы, идентифицированные в прямой ассоциации с PPN

Несколько исследований были сосредоточены на структуре и разнообразии микробных сообществ, связанных с разными стадиями жизни PPN. Поскольку подвижные стадии нематод находятся в почве до тех пор, пока не найдут подходящие корни для питания, их связь с почвенными микроорганизмами изучена наиболее полно. Анализ микробного сообщества возбудителя J2 узловатой нематоды выявил преобладание бактериальных родов Sphingomonas , Micrococcus , Bacillus , Methylobacterium , Rhizobium и Rhizobium и грибов Borasea гена Bosea. и Rhizophydium в почвах, подавляющих M.hapla (Адам и др., 2014b). Кроме того, J2 из M. incognita были обогащены грибами родов Malassezia , Plectosphaerella , Gibellulopsis и Lectera в почве, подавляющей этот вид нематод (Elhady et al., 2017). Примечательно, что Elhady et al. (2017) также обнаружили ассоциацию бактерии Bacillus thuringiensis и гриба Plectosphaerella cucumerina с M. incognita J2 в почве. B. thuringiensis продуцирует белковые кристаллы протоксина (называемые кристаллическим белком или Cry-белком), которые вызывают лизис кишечника и гибель нематод (Griffitts et al., 2005; Vachon et al., 2012). P. cucumerina был также выделен из яиц M. incognita (Yu and Coosemans, 1998) и яиц G. pallida (Kooliyottil et al., 2017), и было обнаружено, что они заражают яйца G. rostochiensis (Аткинс и др., 2003). Анализ микробного сообщества с использованием бактериального гена 16S рРНК и секвенирования ITS-ампликона из G.pallida показали преобладание разнообразной микробиоты, такой как Burkholderia , Bosea , Rhizobium , Devosia , Ralstonia , и Streptomyces , David173 Hussea , и роды грибов Hussea . , Microdochium , Monographella и Penicillium в почве для монокультуры картофеля (Eberlein et al., 2016). Некоторые из родов бактерий ранее были связаны с инфекционными стадиями корневых узловатых и поражающих нематод в подавляющих почвах (Adam et al., 2014b; Эльхади и др., 2017).

Взрослые самки цистовых нематод сначала появляются на корнях, а затем развиваются в зрелые коричневые цисты, которые оказываются в окружающей почве. Яйца внутри цист колонизируются рядом микробов (Nour et al., 2003), и сообщалось, что цисты могут переносить подавляющие микробы в почву, благоприятную для нематод (Westphal and Becker, 2001). Самая ранняя попытка охарактеризовать бактериальную и грибную микробиоту, населяющую цисты в супрессивной почве с использованием OFRG, позволила идентифицировать основные таксономические группы бактерий (α- Proteobacteria , β- Proteobacteria , γ- Proteobacteria , Cytophaga-Flexibacter-Bacteroides , и Actinobacteria ) и грибов ( D.oviparasitica , F. oxysporum и Lycoperdon spp.), а затем были объединены с количественной ПЦР для выявления ассоциации Rhizobium – и D. oviparasitica -подобных групп рДНК с подавляющей способностью H. schachtii (Инь и др., 2003а, б). Кроме того, используя высокопроизводительное секвенирование ампликонов для изучения грибковых и бактериальных сообществ цист в почве, подавляющих H. glycines , Hu et al. (2017) продемонстрировали, что супрессивность связана с изменением относительной численности различных бактериальных и грибных таксонов, особенно P.chlamydosporia , Exophiala spp. и Clonostachys rosea . Аналогичным образом, исследование грибов из яичных масс M. incognita выявило в общей сложности 11 филотипов, включая P. chlamydosporia , которые, как предполагалось, участвовали в регуляции популяций узловатых нематод (Bent et al., 2008). . Недавно Hussain et al. (2018) подчеркнули взаимодействие между цистой H. glycines и микробиотой корня сои, используя высокопроизводительное секвенирование области V4 бактериального гена 16S рРНК.В частности, они показали, что микробный консорциум, обогащенный нематодной инфекцией в ризосфере и корневой эндосфере, также колонизировал цисты нематод. Это указывает на то, что цисты могут служить источником инокулята для подавления нематод. Более того, бактериальное сообщество цисты H. glycines было установлено путем последовательного отбора бактериальных таксонов из корневой эндосферы. Бактериальная микробиота, включая Chitinophaga , Yersinia , Lentzea , Niastella и Pseudoxanthomonas , доминировала в бактериальном сообществе цист в подавляющей почве (Hussain et al., 2018). Chitinophaga представляет собой разложитель хитина с активностью хитиназы (Sangkhobol and Skerman, 1981; McKee et al., 2019), а хитин является важным элементом яичной скорлупы нематод (Gortari and Hours, 2008). Хитиназы могут влиять на жизнеспособность яиц и вылупление (Chen and Peng, 2019). Кроме того, образующиеся хитиназой хитоолигосахариды могут индуцировать экспрессию генов, связанных с паразитизмом, в грибах, паразитирующих на яйцах (Escudero et al., 2016), населяющих цисты (Hu et al., 2018, 2020). Таким образом, микробиота, непосредственно связанная со стадиями PPN в супрессивных почвах, демонстрирующая способность подавления нематод, проливает свет на потенциальную роль различных микробных консорциумов в этой заманчивой микробиологической среде.

Микробы, обнаруженные в почвах с пониженной продуктивностью нематод

Недавнее использование технологий, не зависящих от культивирования, позволило глубже понять состав микробного сообщества ризосферных почв и их вклад в подавление PPN.Сообщалось, что различные бактериальные и грибковые таксоны обогащаются в почвах с низким содержанием PPN или с плохой эффективностью PPN на растениях-хозяевах, выращиваемых в этих почвах. Например, Giné et al. (2016) исследовали структуру основной массы почвенной микробиоты, используя фингерпринт бактериальных и грибковых сообществ с помощью DGGE. Они обнаружили, что бактерии, отнесенные к Lysobacter , Flavobacterium , Chryseobacterium , Flexibacter , Steroidobacter и Methylobacterium , а также грибы, отнесенные к Morus 173, Cladosporium , Cladosporium , Preussia и Stachybotrys часто обнаруживались в почвах с низкой численностью корневых нематод.Следовательно, гриб P. chlamydosporia был изолирован и подтвержден как паразитирующий на яйцах Meloidogyne (Giné et al., 2016). В другом исследовании P. chlamydosporia вместе с грибком Purpureocillium lilacinum и бактерией Pseudomonas sp. Также были отмечены как основные таксоны, населяющие ризосферу растений сои, которые выращивались в почвах северо-восточного Китая. и которые были супрессивными в отношении H. glycines (Hamid et al., 2017). Эти два гриба, паразитирующие на яйцах, показали сильное географическое предпочтение. Бактерия Pseudomonas sp. имел более высокую относительную численность в подавляющих, чем в благоприятных почвах во всех географических точках (Hamid et al., 2017). Было высказано предположение, что почвы, обладающие способностью подавлять определенные заболевания, имеют память о ранее встреченных патогенах (Raaijmakers and Mazzola, 2016). Те микробные консорциумы, которые отреагировали на атаку патогенов в предыдущем поколении растений, вероятно, являются ключевыми драйверами памяти почвы против конкретных патогенов (Berendsen et al., 2018). Таким образом, растения могут применять стратегию «крика о помощи» во время вторжения патогенов, что приводит к селективному обогащению определенного набора микробов в почве (Bakker et al., 2018). Кроме того, высокопроизводительные последовательности грибкового локуса ITS показали, что как P. chlamydosporia , так и P. lilacinum были увеличены в ризосфере при комбинированном внесении в почву эндопаразитического гриба нематоды Hirsutella minnesotensis и хитозана для подавления H. . глицины (Mwaheb et al., 2017). Точно так же почвы с низкой плотностью популяции Pratylenchus neglectus и Meloidogyne chitwoodi были обогащены ризобактериями Arthrobacter , Bacillus и Lysobacter , что было выявлено с помощью анализа бактериальной области с высоким уровнем V-16. Ген рРНК (Castillo et al., 2017). Что касается бактерий, Hussain et al. (2018) с использованием высокопроизводительного секвенирования области V4 бактериального гена 16S рРНК идентифицировали менее 30 родов, в том числе Pasteuria, Pseudomonas и Rhizobium , которые были обогащены в ризосфере и / или эндосфере корней выращиваемых сои. в подавляющей почве и связано с подавлением H.глицины в условиях монокультуры многолетних культур.

Важно отметить, что мы суммировали механизмы биоконтроля нематод наиболее часто обнаруживаемых антагонистических микробных консорциумов из супрессивных почв, таких как грибы Pochonia , Dactylella , Nematophthora , Purpureocillium Hdrmahora , Catenaria , Arthrobotrys , Dactylellina , Drechslerella и Mortierella , а также бактерии Pasteuria , Bacillus Pasteuria , Bacillus R , Streizomy Pseudomy Lysobacter и Variovorax (рисунок 1).Что касается грибов, был описан широкий спектр видов-антагонистов, обладающих способностью улавливать, паразитировать или отравлять нематод или подавлять эндопаразитарный PPN путем индукции системной устойчивости у растений (Yang et al., 2007; Szabó et al. , 2012; Аскары, 2015; Martínez-Medina et al., 2017; Zhang et al., 2019). Точно так же бактериальные антагонисты часто обладают более чем одним механизмом действия. Хотя паразитизм нематод с помощью Pasteuria был наиболее широко изучен, эффективность антагонизма нематод бактериальными токсинами, выработка летучих органических соединений и репеллентность нематод из корней за счет индуцированной бактериями системной устойчивости растений также изучалась (Siddiqui и Махмуд, 1999; Wei et al., 2003; Sikora et al., 2007; Тиан и др., 2007; Ли и др., 2015). Результаты недавних исследований по характеристике микробиоты, связанной с почвой, корнями растений и нематодами в подавляющих почвах, обобщены в Таблице 1.

Таблица 1. ДНК-характеристика бактериальной и грибной микробиоты, населяющей почву, корни растений и стадии нематод (подвижные и оседлые) в почвах, подавляющих болезни.

Чтобы получить более полное представление об активной микробиоте и выявить другие антагонистические микробные признаки, присутствующие в почвах, подавляющих нематоды, метагеномный дробовик (Chapelle et al., 2016), метатранскриптомический (Chapelle et al., 2016) и метаболомный (Hayden et al., 2019) подходы могут применяться или комбинироваться. Комбинируя метагеномику и метатранскриптомику, Chapelle et al. (2016) обнаружили, что после грибковой инвазии гены, связанные со стрессом, активируются в семьях бактерий, населяющих ризосферу сахарной свеклы, выращенной в подавляющей почве. Грибковый патоген Rhizoctonia solani секретировал фенилуксусную и щавелевую кислоты во время колонизации корней растений, что приводило к окислительному стрессу у растений и микробов ризосферы.Эта реакция на окислительный стресс вызвала изменение бактериального состава и активировала антагонистические свойства, ограничивающие инфекцию патогена. Кроме того, Hayden et al. (2019) с помощью метаболомного и метатранскриптомического анализов выявили, что молекул сахара было больше в почвах, подавляющих R. solani , чем в почвах, способствующих почве R. solani . Они обнаружили, что наиболее распространенным соединением, связанным с подавляющими почвами, был антимикробный вторичный метаболит macrocarpal L. Эти исследования продемонстрировали, что сочетание различных подходов может дать нам подробное представление о микробах и механизмах, задействованных в подавляющих болезни почвах.Чтобы признать огромный вклад растений в антагонизм нематод со стороны полезных микробов в почве, в следующих двух разделах мы сосредоточимся на взаимодействиях нематод и микробов в ризосфере и на участии корневых экссудаций в этом отношении.

Важность микробиоты ризосферы во взаимодействиях растений и нематод

Наиболее интенсивные взаимодействия между подвижными стадиями PPN и почвенными микроорганизмами происходят в ризосфере. Нематоды воспринимают сигналы окружающей среды с помощью различных сенсилл, но наиболее изученными являются парные передние органы чувств, называемые амфидами.Они расположены в области головы нематоды и состоят из клетки оболочки железы, клетки розетки и секретов, которые производятся клеткой оболочки и которые окружают многие дендритные отростки (Perry, 1996). Амфиды несут ответственность за перемещение PPN к корням хозяина, обеспечивая их положительное взаимодействие с химическими сигналами, высвобождаемыми из корней. Рейнольдс и др. (2011) предположили, что диапазон хозяев определенных видов нематод определяет, реагируют ли они на общие или более специфические сигналы растений.На экспрессию генов в Pratylenchus coffeae повлияли специфично для хозяина компоненты клеточной стенки, которые либо секретировались растением, либо высвобождались при деградации корневой ткани (Bell et al., 2019). Целлюлоза или ксилан из растений-хозяев повышали уровень генов β-1,4-эндоглюканазы или β-1,4-эндоксиланазы соответственно. Растения могут мешать передаче сигналов PPN (Manohar et al., 2020), и вполне вероятно, что также микробная активность модулирует и опосредует коммуникацию между растением и нематодами.Блокирование сигналов растений или хеморецепторов нематод приводит к отпугиванию нематод от корней (Zuckerman, 1983). Однако сами по себе компоненты корней растений не полностью влияют на привлекательность нематод для корней и последующего вторжения. Чтобы добраться до корней, нематодам необходимо пройти через почвенное пространство длиной от одного до нескольких миллиметров в непосредственной близости от корня, которое называется ризосферой. Это очень активная зона вдоль растущих корней с постоянным поглощением воды и питательных веществ, экссудацией корней и микробной активностью (Berg and Smalla, 2009).Было подсчитано, что кислотность почвы в ризосфере в 10 раз выше, чем в массивной почве, что свидетельствует об очень выраженном корневом воздействии на химические и биологические характеристики окружающей почвы (Hübel and Beck, 1993). Как тип почвы, так и генотип растения вносят вклад в состав микробных сообществ в ризосфере (Micallef et al., 2009). Состав экссудатов варьируется в зависимости от вида растений (Badri, Vivanco, 2009; Eisenhauer et al., 2016) и генотипов (Mönchgesang et al., 2016).Модуляция микробиома корневыми экссудатами вызывает обратную связь микробиома. Эта обратная связь между растением и почвой может поддерживать рост и / или здоровье растения и следующих растений, растущих в той же почве (van der Putten et al., 2016; Brinkman et al., 2017). Эффекты обратной связи между растениями и почвой различались для разных видов растений, но количество PPN, питающихся корнями определенного вида растений, коррелировало с отрицательной обратной связью между растениями и почвой (Wilschut et al., 2019). Когда растения атакуют патогены и паразиты, они полагаются на свой корневой микробиом, что приводит к селективному обогащению защитных растений микробов и микробной активности в ризосфере (Bakker et al., 2018). Важность ризосферного микробиома во взаимодействиях растений и нематод была подробно рассмотрена (Kerry, 2000; Griffiths et al., 2007; Sikora et al., 2007; Nyaku et al., 2017; Topalović and Heuer, 2019). Важно отметить, что некоторые недавние исследования показали, что перенос микробиома ризосферы от одной культуры к другой значительно облегчил инфекцию нематод и повысил устойчивость растений к PPN (Elhady et al., 2018; Zhou et al., 2019). Этот эффект зависел от вида растений.Собственный микробиом растения защищал его от корневого вторжения PPN лучше, чем основной микробиом почвы или чужеродный микробиом, за заметным исключением высокосупрессивного микробиома кукурузы (Elhady et al., 2018). Кроме того, Hussain et al. (2018) показали, что одна и та же подгруппа микробных OTU обычно обогащалась в ризосфере и корневой эндосфере после заражения нематодами в подавляющей почве. Это указывает на сильную связь между растениями и связанной с ними микробиотой, когда они находятся под угрозой PPN.В этом случае микробиота ризосферы может действовать как первая линия защиты от вторжения PPN, в то время как микробиота корневой эндосферы может действовать как вторая линия защиты от успешно вторгшихся нематод. В зависимости от микроорганизмов, связанных с корнями, PPN может противодействовать паразитизму, интоксикации, продукции летучих органических соединений или системной резистентности растений, индуцированной микробами (рис. 2). Чаще всего для подавления нематод почвенная микробиота использует объединенные усилия более чем одного механизма действия.Topalović et al. (2020b) показали в эксперименте с раздвоенным корнем, что микроорганизмы из супрессивной почвы индуцировали системную устойчивость растений томата против M. hapla , но комбинация прямого антагонизма и индуцированной устойчивости обеспечивала лучшую защиту растений. Они также показали в стерильной системе, что микробы, прикрепляющиеся к кутикуле M. hapla в подавляющей почве, индуцировали системную резистентность у растения при инвазии нематод (Topalović et al., 2020а). Кроме того, в последние годы ученые интенсивно изучали роль летучих органических соединений растений и микробов в паразитизме нематод (Huang et al., 2010; Yang et al., 2012; Barros et al., 2014; Xu et al., 2015). ; Estupiñan-López et al., 2018; Silva et al., 2018; Pedroso et al., 2019). Таким образом, потенциал корневой микробиоты для помощи растениям в борьбе с PPN огромен. В следующем разделе более подробно обсуждается роль корневых экссудатов во взаимодействии нематод и микробов.

Рис. 2. Подземная связь между корнями растений, связанной с ними микробиотой и паразитирующими на растении корневыми узелками или цистовыми нематодами.

Роль поверхностного слоя нематод и корневых экссудатов во взаимодействиях растений, нематод и микробов

Когда дело доходит до взаимодействия с почвенными микроорганизмами, самой интригующей особенностью тела нематод является СК. Это богатый углеводами белковый слой, секретируемый над эпикутикулом гиподермой (Curtis et al., 2011), выделительной и нервной системой (Lin and McClure, 1996). SC, вероятно, участвует в распознавании лектин-подобных белковых молекул на микробной поверхности с помощью своих гликогидратных эпитопов (Bird, 2004; Davies and Curtis, 2011). Bird (2004) представил очень краткий и подробный обзор распознавания и последствий взаимодействия нематод-микробов. В зависимости от микроорганизма связь между ними может привести к паразитизму, например, Anguina sp. и паразитический Rathayibacter sp.(Bird, 1985; Riley, Reardon, 1995) или Meloidogyne sp. и паразитический Pasteuria sp. (Davies, 2009), комменсализм, например, Longidorus sp., Xiphinema sp., Trichodorus sp. И Paratrichodorus sp. как вирусные векторы (Taylor and Brown, 1997), мутуализм, например, Steinernema sp. и их эндосимбиотические бактерии Xenorhabdus sp. (Lacey and Georgis, 2012) или форезная ассоциация, например, Steinernema и бактерия Paenibacillus sp.(Эль-Борай и др., 2005). Некоторые исследования показали, что корневые экссудаты и некоторые фитогормоны, такие как индолуксусная кислота, могут изменять SC PPN (Akhkha et al., 2002; Curtis, 2008) и влиять на последующее прикрепление микроорганизмов к поверхности нематод (Singh et al. ., 2014; Liu et al., 2017). Точно так же Лопес де Мендоса и др. (2000) зарегистрировали повышенное поглощение флуоресцентного аналога липидов 5-N- (октадеканоил) аминофлуоресцеина (AF18) SC J2 M. incognita и паразитической нематодой животных Haemonchus contortus после воздействия экссудатов корней томатов на 30 минут.Экссудаты корней разных видов растений по-разному влияют на прикрепление эндоспор P. Penetrans к J2 узловатых нематод (Singh et al., 2014; Liu et al., 2017). Это говорит о том, что существует корреляция между типом хозяина корневых экссудатов и взаимодействиями нематод и микробов в почве. Было обнаружено, что прикрепление эндоспор P.penetrans к J2 из M. incognita усиливалось, когда J2 подвергались воздействию корневых экссудатов в присутствии почвенных микроорганизмов (Singh et al., 2014). Поскольку секреция нематод и компоненты SC впервые воспринимаются растением при встрече с нематодами (Curtis, 2008; Mendy et al., 2017), маскирование этих рецепторов нематод при прикреплении микробов к нематоде в почве может снизить распознавание нематод растением. С другой стороны, некоторые эндопаразитические нематоды, такие как Meloidogyne spp., Прячутся от сильных защитных реакций растений, перемещаясь через апопласт, пока не достигнут постоянных участков питания (Sijmons et al., 1991; Williamson and Hussey, 1996; Shah et al. ., 2017). Недавно было показано, что микроорганизмы, прикрепляющиеся к J2 M. hapla в супрессивной почве до проникновения J2 в корни, увеличивают свое распознавание растением за счет активации нескольких генов защиты, отвечающих за PTI (Topalović et al., 2020a). Изучение вызванных микробами химических и метаболических изменений восприятия нематод растением могло бы лучше прояснить точные механизмы этого трехстороннего взаимодействия. Кроме того, нематода SC постоянно обновляется и обновляется (Spiegel, McClure, 1995; Spiegel et al., 1995; Gravato-Nobre et al., 1999; Curtis et al., 2011). Исследование нематод, паразитирующих на животных, показало, что SC изменился через несколько минут после воздействия на нематод условий, эквивалентных условиям внутри хозяина, за исключением влияния линьки за такое короткое время (Proudfoot et al., 1993). Выброшенные отложения SC внутри растения или животного-хозяина могут обмануть иммунные эффекторы растений и удержать их от мобильных нематод, которые ищут более стабильное место питания (Blaxter et al., 1992).Таким образом, хотя корневые экссудаты важны для привлечения нематод к корням, они также могут напрямую влиять на взаимодействие нематод с почвенными микроорганизмами, вызывая изменения на поверхности PPN. Природа этих взаимодействий и тип почвенных микроорганизмов и корневых экссудатов определяют, будет ли PPN уклоняться от иммунных реакций растений или не заразить растение.

Заключительные замечания и перспективы на будущее

Нематоды, паразитирующие на растениях, наносят значительный ущерб овощным и агрономическим культурам во всем мире.Примечательно, что большинство исследований было проведено на нескольких видах эндопаразитарных оседлых родов Meloidogyne , Heterodera и Globodera . Исследования других PPN дадут возможность обобщить выводы о взаимодействиях PPN в фитобиоме и признать видовые или родовые различия в жизненных стратегиях (Topalović et al., 2020b). Микроорганизмы, способствующие естественному подавлению PPN в почвах, были изучены с использованием культурально-зависимых и культурально-независимых методов.Специфическое подавление почвы в основном объясняется антагонистической активностью селективных микробных консорциумов против яиц, молоди или самок PPN. Эффекты in vitro изолированных микробных штаммов часто не воспроизводятся при повторном введении штаммов в благоприятные полевые почвы из-за их неспособности колонизировать корни и полностью выражать предполагаемые способы действия. В то время как выделение конкретных микробных антагонистов имеет важное значение для их массового производства и применения в комплексной борьбе с вредителями PPN, характеристика микробиомов, связанных с растениями и нематодами, на основе ДНК / РНК важна для более полного понимания взаимодействия между нематодами и их обитателями. естественные враги в почве, ризосфере и растении.Параллельно успех заражения нематодой зависит от того, как сигнальные молекулы с поверхности нематод воспринимаются корнями растений. Семиохимические вещества, выделяемые растением вместе с корневыми экссудатами, важны не только для связи между растениями и нематодами, но они также напрямую влияют на взаимодействия нематод и микробов, модулируя компоненты поверхности нематод. В зависимости от диапазона хозяев нематод и микробного состава почвы, эндопаразитические нематоды могут уклоняться от защитных реакций растений и успешно внедряться внутри корней, или они могут противодействовать внутри (эндосфера корня) или снаружи (ризосфера) растения.Таким образом, растения безгранично полагаются на свой корневой микробиом во время инвазии нематод, что приводит к обогащению определенного подмножества защитных микробов растений в ризосфере и корневой эндосфере (Hussain et al., 2018). Более того, глубокое понимание межкорпоративных микробно-микробных взаимодействий в почвенных экосистемах может помочь обогатить численность и активность местных таксонов ключевых микробов с помощью таких методов ведения сельского хозяйства, как севооборот (Hu et al., 2018) или обработка почвы (Hu et al., 2017) или путем внесения в почву таких добавок, как хитин (Cretoiu et al., 2013) или хитозан (Mwaheb et al., 2017). Раскрытие структуры и функций микробиома в почвах, подавляющих нематоды, и понимание их взаимосвязи с растением предоставит нам больше знаний о механизмах, ответственных за подавление нематод, и может помочь в развитии синтетических микробных сообществ или управлении биомом почвы для биоконтроля PPN.

Авторские взносы

OT и MH задумали, развили тему и написали рукопись.MH подготовил цифры. Х. Х. внес свой вклад в разработку идей и внес критические исправления в рукопись.

Финансирование

OT финансировался грантом Немецкого исследовательского фонда DFG HE6957 / 1-1.

Конфликт интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Список литературы

Adam, M., Heuer, H., and Hallmann, J.(2014a). Бактериальные антагонисты грибковых патогенов также управляют нематодами корневых узлов путем индуцирования системной резистентности растений томата. PLoS One 9: e. DOI: 10.1371 / journal.pone.00

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Adam, M., Westphal, A., Hallmann, J., and Heuer, H. (2014b). Специфическая микробная привязанность к нематодам корневых узлов в подавляющей почве. Заявл. Environ. Microbiol. 80, 2679–2686. DOI: 10.1128 / AEM.03905-13

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ахха, А., Кусел, Дж., Кеннеди, М., и Кертис, Р. (2002). Воздействие фитогормонов на поверхности нематод, паразитирующих на растениях. Паразитология 125, 165–175. DOI: 10.1017 / S0031182002001956

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Alabouvette, C., Olivain, C., Migheli, Q., и Steinberg, C. (2009). Микробиологический контроль почвенных фитопатогенных грибов с особым вниманием к вызывающим увядание грибам Fusarium oxysporum . New Phytol. 184, 529–544.DOI: 10.1111 / j.1469-8137.2009.03014.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Аманн Р., Людвиг В. и Шлейфер К.-Х. (1995). Филогенетическая идентификация и обнаружение in situ отдельных микробных клеток без культивирования. Microbiol. Ред. 59, 143–169. DOI: 10.1128 / mmbr.59.1.143-169.1995

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Аскары Т. Х. (2015). «Нематофаги как агенты биоконтроля фитонематод» в Biocontrol Agents of Phytonematodes , eds T.Х. Аскари и П. Р. Мартинелли (Wallingford: CAB International), 81–125. DOI: 10.1079 / 9781780643755.0081

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Аткинс, С. Д., Кларк, И. М., Сосновска, Д., Хирш, П. Р., Керри, Б. Р. (2003). Обнаружение и количественная оценка Plectosphaerella cucumerina , потенциального агента биологической борьбы с нематодами картофельных цист, с помощью стандартной ПЦР, ПЦР в реальном времени, селективных сред и приманки. Заявл. Environ. Microbiol. 69, 4788–4793. DOI: 10.1128 / aem.69.8.4788-4793.2003

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Бадри, Д. В., и Виванко, Дж. М. (2009). Регуляция и функция корневых экссудатов. Plant Cell Environ. 32, 666–681. DOI: 10.1111 / j.1365-3040.2009.01926.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Бейкер К. и Кук Р. Дж. (1974). Биологический контроль патогенов растений. Нью-Йорк, Нью-Йорк: WH Freeman and Company, 433.

Google Scholar

Баррос, А. Ф., Кампос, В. П., да Силва, Дж. К. П., Педросо, М. П., Медейрос, Ф. Х. В., Поцца, Э. А. и др. (2014). Нематицидная активность летучих органических соединений, выделяемых Brassica juncea , Azadirachta indica , Canavalia ensiformis , Mucuna pruriens и Cajanus cajan против Meloidogyne incognita . Заявл. Soil Ecol. 80, 34–43. DOI: 10.1016 / j.apsoil.2014.02.011

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Беккер Дж. С., Борнеман Дж. И Беккер Дж. О. (2013). Dactylella oviparasitica паразитизм цистовой нематоды сахарной свеклы, наблюдаемый в чашках с триксенными культурами. Biol. Контроль 64, 51–56. DOI: 10.1016 / j.biocontrol.2012.10.007

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Белл, К. А., Лилли, К. Дж., Маккарти, Дж., Аткинсон, Х. Дж., И Урвин, П. Э. (2019). Нематоды, паразитирующие на растениях, реагируют на сигналы корневого экссудата с помощью паттернов экспрессии генов, специфичных для хозяина. PLoS Pathog. 15: e1007503. DOI: 10.1371 / journal.ppat.1007503

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Бент, Э., Лоффредо, А., Маккенри, М. В., Беккер, Дж. О., и Борнеман, Дж. (2008). Обнаружение и исследование биологической активности почвы в отношении Meloidogyne incognita . J. Nematol. 40, 109–118.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Берендсен, Р. Л., Висманс, Г., Ю., К., Сонг, Ю., де Йонге, Р., Burgman, W. P., et al. (2018). Вызванная болезнью совокупность целевого бактериального консорциума, полезного для растений. ISME J. 12, 1496–1507. DOI: 10.1038 / s41396-018-0093-1

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Берг, Г., Смолла, К. (2009). Виды растений и тип почвы совместно формируют структуру и функцию микробных сообществ в ризосфере. FEMS Microbiol. Ecol. 68, 1–13. DOI: 10.1111 / j.1574-6941.2009.00654.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Бхуйян, С.А., Гарлик К., Андерсон Дж. М., Викрамасингх П. и Стирлинг Г. Р. (2018). Биологическая борьба с узловатой нематодой на сахарном тростнике в почве, естественно или искусственно зараженной Pasteuria Penetrans . Australas. Завод Патол. 47, 45–52. DOI: 10.1007 / s13313-017-0530-z

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Берд, А. Ф. (1985). Природа адгезии Corynebacterium rathayi к кутикуле инфекционной личинки Anguina agrostis . Внутр. J. Parasitol. 15, 301–308. DOI: 10.1016 / 0020-7519 (85)

-0

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Берд, А. Ф. (2004). «Поверхностная адгезия к нематодам и ее последствия», в Nematology: Advances and Perspectives , ред. З. X. Чен, С. Чен и Д. У. Диксон (Wallingford: CABI Publishing), 295–392.

Google Scholar

Берд А. Ф. и Брисбен П. Г. (1988). Влияние Pasteuria Penetrans в полевых почвах на размножение узловатых нематод. Revue Nématol. 11, 75–81.

Google Scholar

Блэкстер, М. Л., Пейдж, А. П., Рудин, В., и Майзелс, Р. М. (1992). Поверхностная оболочка нематод: активно ускользает от иммунитета. Parasitol. Сегодня 8, 243–247. DOI: 10.1016 / 0169-4758 (92)

-M

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Борнеман Дж. И Беккер Дж. О. (2007). Выявление микроорганизмов, участвующих в подавлении конкретных патогенов в почве. Annu. Rev. Phytopathol. 45, 153–172. DOI: 10.1146 / annurev.phyto.45.062806.094354

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Борнеман Дж., Олатинво Р., Инь Б. и Беккер Дж. О. (2004). Экспериментальный подход к идентификации микроорганизмов, участвующих в определенных функциях: использование для понимания почвы, подавляющей нематоды. Australas. Завод Патол. 33, 151–155.

Google Scholar

Бринкман, Э. П., Рааймейкерс, К. Э., де Бур, В., и ван дер Путтен, В. Х. (2017). Изменение почвенного наследия на прямое восстановление растительных сообществ. Растения AoB 9: lx038. DOI: 10.1093 / aobpla / plx038

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кастильо, Дж. Д., Виванко, Дж. М., и Мантер, Д. К. (2017). Бактериальный микробиом и встречаемость нематод в различных сельскохозяйственных почвах картофеля. Microb. Ecol. 74, 888–900. DOI: 10.1007 / s00248-017-0990-2

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Chen, Q., и Пэн Д. (2019). «Хитин нематод и его применение», в: Ориентация на хитинсодержащие организмы. Достижения экспериментальной медицины и биологии, , Vol. 1142. под ред. К. Янга и Т. Фукамизо (Сингапур: Springer), 209–219. DOI: 10.1007 / 978-981-13-7318-3_10

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чен, С. (2007). Подавление Heterodera glycines в почвах на полях с многолетним выращиванием сои. Biocontrol Sci. Техн. 17, 125–134. DOI: 10.1080 / 09583150600937121

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чен, С., Диксон, Д. У., Кимбро, Дж. У., МакСорли, Р., и Митчелл, Д. Дж. (1994a). Грибы, ассоциированные с самками, и цисты Heterodera glycines на соевом поле во Флориде. J. Nematol. 26, 296–303.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Чен, С. Ю., Диксон, Д. В., и Митчелл, Д. Дж. (1996a). Патогенность грибов на яйца Heterodera glycines . J. Nematol. 28, 148–158.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Чен, С. Ю., Диксон, Д. В., и Митчелл, Д. Дж. (1996b). Развитие популяции Heterodera glycines в ответ на микофлору в почве Флориды. Biol. Контроль 6, 226–231. DOI: 10.1006 / bcon.1996.0028

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чен С., Диксон Д. В. и Уитти Э. Б. (1994b). Ответ Meloidogyne spp. – Pasteuria Penetrans , грибы и культивирование табака. J. Nematol. 26, 620–625.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Чен, З. X., и Диксон, Д. У. (1998). Обзор Pasteuria Penetrans : биология, экология и возможности биологической борьбы. J. Nematol. 30, 313–340.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Коладжиеро, М., Россо, Л. К., и Чиансио, А. (2017). Разнообразие и потенциал биоконтроля бактериальных консорциумов, связанных с узловатыми нематодами. Biol. Контроль 120, 11–16.DOI: 10.1016 / j.biocontrol.2017.07.010

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Коллингвуд, К. А. (1962). Непрерывное выращивание кукурузы и злакового морского червя на Юго-Западе. NAAS Q. Rev. 58, 70–73.

Google Scholar

Кук, Р. Дж., И Бейкер, К. Ф. (1983). Природа и практика биологического контроля патогенов растений. Сент-Пол, Миннесота: Американское фитопатологическое общество, 539.

Google Scholar

Коста, С.Р., Керри, Б. Р., Барджетт, Р. Д., и Дэвис, К. Г. (2012). Взаимодействие между нематодами и их микробными врагами в прибрежных песчаных дюнах. Oecologia 170, 1053–1066. DOI: 10.1007 / s00442-012-2359-z

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Cretoiu, M. S., Korthals, G. W., Visser, J. H., and van Elsas, J. D. (2013). Поправка с хитином увеличивает подавляющую способность почвы по отношению к патогенам растений и модулирует сообщества актинобактерий и оксалобактерий на экспериментальном сельскохозяйственном поле. Заявл. Environ. Microbiol. 79, 5291–5301. DOI: 10.1128 / AEM.01361-13

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Крамп, Д. Х., Флинн, К. А. (1995). Выделение и скрининг грибов для биологической борьбы с нематодами картофельных цист. Nematologica 41, 628–638. DOI: 10.1163 / 003925995×00567

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Крамп Д. Х. и Керри Б. Р. (1987). Исследования динамики численности и грибкового паразитизма Heterodera schachtii в почве монокультуры сахарной свеклы. Crop Prot. 6, 49–55. DOI: 10.1016 / 0261-2194 (87) -7

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кертис, Р. Х. К. (2008). Взаимодействие растений с нематодами: сигналы окружающей среды, обнаруживаемые хемосенсорными органами нематод, контролируют изменения в поверхностной кутикуле и поведении. Паразиты 15, 310–316. DOI: 10,1051 / паразит / 2008153310

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Кертис, Р. Х. К., Джонс, Дж. Т., Дэвис, К.Г., Шарон, Э., Шпигель, Ю. (2011). «Поверхности растительных нематод», в «Биологический контроль над паразитическими нематодами растений». Создание согласованности между микробной экологией и молекулярными механизмами , ред. К. Г. Дэвис и Ю. Шпигель, (Дордрехт: Springer Science + Business Media), 115–144. DOI: 10.1007 / 978-1-4020-9648-8_5

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Дэвис, К. Г. (2009). «Понимание взаимодействия между облигатной гиперпаразитарной бактерией, Pasteuria Penetrans и ее облигатным растительно-паразитическим хозяином-нематодой, Meloidogyne spp», в Natural History of Host-Parasite Interactions.Успехи в паразитологии , Vol. 68, изд. Дж. П. Вебстер, (Оксфорд: Academic Press), 211–245. DOI: 10.1016 / s0065-308x (08) 00609-x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Дэвис, К. Г., Флинн, К. А., Лэрд, В., и Керри, Б. Р. (1990). Жизненный цикл, популяционная динамика и специфичность хозяина паразита Heterodera avenae , аналогичного Pasteuria Penetrans . Revue Nématol. 13, 303–309.

Google Scholar

Диклоу, Б.М., Акоста Н. и Цукерман Б. М. (1993). Новый вид Streptomyces для борьбы с нематодами, паразитирующими на растениях. J. Chem. Ecol. 19, 159–173.

Google Scholar

Эберлейн, К., Хойер, Х., Видаль, С., и Вестфаль, А. (2016). Микробные сообщества у самок Globodera pallida , выращенных на монокультурной почве картофеля. Фитопатология 106, 581–590. DOI: 10.1094 / Phyto-07-15-0180-R

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Эйзенхауэр, Н., Barnes, A.D., Cesarz, S., Craven, D., Ferlian, O., Gottschall, F., et al. (2016). Эксперименты по биоразнообразию и функции экосистемы раскрывают механизмы, лежащие в основе последствий изменения биоразнообразия в экосистемах реального мира. J. Veg. Sci. 27, 1061–1070. DOI: 10.1111 / jvs.12435

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Эль-Бораи, Ф. Э., Дункан, Л. У., и Престон, Дж. Ф. (2005). Биономика форетической ассоциации между Paenibacillus sp. и энтомопатогенная нематода Steinernema diaprepesi . J. Nematol. 37, 18–25.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Эльхади А., Адсс С., Халльманн Дж. И Хойер Х. (2018). Микробиомы ризосферы, модулируемые предпосевными культурами, помогали растениям защищаться от нематод, паразитирующих на растениях. Фронт. Microbiol. 9: 1133. DOI: 10.3389 / fmicb.2018.01133

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Эльхади, А., Жине, А., Топалович, О., Жаккиод, С., Соренсен, С. Дж., Соррибас, Ф.J., et al. (2017). Микробиомы, связанные с инфекционными стадиями корневых узловатых нематод и пораженных нематод в почве. PLoS One 12: e0177145. DOI: 10.1371 / journal.pone.0177145

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Эскудеро, Н., Феррейра, С. Р., Лопес-Мойя, Ф., Наранхо-Ортис, М. А., Марин-Ортис, А. И., Торнтон, К. Р. и др. (2016). Хитозан усиливает паразитизм яиц Meloidogyne javanica нематофагом Pochonia chlamydosporia . Fungal Biol. 120, 572–585. DOI: 10.3389 / fpls.2017.01415

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Эснард Дж., Поттер Т. И. и Цукерман Б. М. (1995). Streptomyces costaricanus sp. nov., выделенный из почвы, подавляющей нематоды. Внутр. J. Syst. Evol. Microbiol. 45, 775–779. DOI: 10.1099 / 00207713-45-4-775

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Estupiñan-López, L., Campos, V. P., da Silva Júnior, J.К., Педросо, М. П., Терра, В. К., и да Силва, Дж. С. П. (2018). Летучие соединения, продуцируемые Fusarium spp. выделено из Meloidogyne paranaensis яичная масса и корковые ткани корня кофейных культур токсичны для Meloidogyne incognita . Троп. Завод Патол. 43, 183–193. DOI: 10.1007 / s40858-017-0202-0

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гейр Р., Матиас П. Л. и Харви П. Н. (1969). Исследования популяций злаковых нематод и урожайности зерновых в условиях непрерывного или интенсивного культивирования. Ann. Прил. Биол. 63, 503–512. DOI: 10.1111 / j.1744-7348.1969.tb02846.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гао, X., Инь, Б., Борнеман, Дж., И Беккер, Дж. О. (2008). Оценка паразитарной активности штаммов Fusarium , полученных из Heterodera schachtii -подавляющей почвы. J. Nematol. 40, 1–6.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Гарбева П., ван Вин Дж. А. и ван Эльзас Дж. Д. (2004).Разнообразие микробов в почве: селекция микробных популяций по типам растений и почвы и их значение для подавления болезней. Annu. Rev. Phytopathol. 42, 243–270. DOI: 10.1146 / annurev.phyto.42.012604.135455

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Giné, A., Bonmatí, M., Sarro, A., Stchiegel, A., Valero, J., Ornat, C., et al. (2013). Естественное распространение грибковых яичных паразитов узловатых нематод, Meloidogyne spp. в системах органического и интегрированного овощеводства в Испании. Biocontrol 58, 407–416. DOI: 10.1007 / s10526-012-9495-6

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хине, А., Карраскилья, М., Мартинес-Алонсо, М., Гаджу, Н., и Соррибас, Ф. Дж. (2016). Характеристика подавляющей способности почвы к узловатым нематодам в органическом садоводстве в пластиковых теплицах. Фронт. Plant Sci. 7: 164. DOI: 10.3389 / fpls.2016.00164

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гортари, М. К., и Час, Р.А. (2008). Грибковые хитиназы и их биологическая роль в антагонизме яиц нематод: обзор. Mycol. Прог. 7, 221–238. DOI: 10.1007 / s11557-008-0571-3

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Gravato-Nobre, M. J., McClure, M. A., Dolan, L., Calder, G., Davies, K. G., Mulligan, B., et al. (1999). Meloidogyne incognita поверхностных антигенных эпитопа в инфицированных корнях Arabidopsis . J. Nematol. 31, 212–223.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Гриффитс, Б.С., Кристенсен, С., Бонковски, М. (2007). «Взаимодействие микрофауны в ризосфере, как нематоды и простейшие связывают надземные и подземные процессы», The Rhizosphere. Экологическая перспектива , ред. З. Кардон и Дж. Л. Уитбек, (Амстердам: Elsevier Academic Press), 57–71. DOI: 10.1016 / b978-012088775-0 / 50005-7

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Гриффитс, Дж. С., Хаслам, С. М., Янг, Т., Гарчински, С. Ф., Маллой, Б., Моррис, Х. и др. (2005).Гликолипиды как рецепторы кристаллического токсина Bacillus thuringiensis . Наука 307, 922–925. DOI: 10.1126 / science.1104444

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хамид, М. И., Хуссейн, М., Ву, Ю., Чжан, X., Сян, М., и Лю, X. (2017). Последовательное выращивание соевых бобов в монокультурных культурах объединяет ризосферные микробные сообщества для подавления в почве цистовых нематод сои. FEMS Microbiol. Ecol. 93: fiw222. DOI: 10.1093 / фемсек / fiw222

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хайден, Х.Л., Рохфорт, С. Дж., Эзерниекс, В., Савин, К. В., и Меле, П. М. (2019). Метаболомические подходы для распознавания почв, подавляющих болезни, для Rhizoctonia solani AG8 в зерновых культурах с использованием 1H ЯМР и ЖХ-МС. Sci. Total Environ. 651, 1627–1638. DOI: 10.1016 / j.scitotenv.2018.09.249

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Heijbroek, W. (1983). Некоторые эффекты грибковых паразитов на популяционное развитие нематоды свекловичной цисты ( Heterodera schachtii Schm.). Медед. Фак. Landbouwwet. Rijksuniv. Гент 48, 433–439.

Google Scholar

Ху Дж., Хуссейн М., Чжан Х., Тиан Дж., Лю Х., Дуань Ю. и др. (2020). Обильная и разнообразная микробиота грибов населяет белых самок и коричневые цисты нематоды злаков. Заявл. Soil Ecol. 147: 103372. DOI: 10.1016 / j.apsoil.2019.103372

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ху В., Самак Д. А., Лю X. и Чен С. (2017). Микробные сообщества в цистах нематоды соевых бобов, пораженные обработкой почвы и биоцидом в подавляющей почве. Заявл. Soil Ecol. 119, 396–406. DOI: 10.1016 / j.apsoil.2017.07.018

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ху, В., Стром, Н., Раджендран, Д., Чен, С., Бушли, К., и Хаарит, Д. (2018). Микобиом цист нематоды соевых бобов в условиях длительного севооборота. Фронт. Microbiol. 9: 386. DOI: 10.3389 / fmicb.2018.00386

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хуанг, X., Тиан, Б., Ниу, К., Ян, Дж., Чжан, Л., и Чжан, К. (2005). Внеклеточная протеаза из Brevibacillus laterosporus G4 без параспоральных кристаллов может служить патогенным фактором при заражении нематод. Res. Microbiol. 156, 719–727. DOI: 10.1016 / j.resmic.2005.02.006

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хуан Ю., Сюй, К. К., Ма, Л., Чжан, К., Дуань, К. К., и Мо, М. Х. (2010). Характеристика летучих веществ, полученных из Bacillus megaterium YFM3.25 и их нематицидная активность против Meloidogyne incognita . Eur. J. Plant Pathol. 126, 417–422. DOI: 10.1007 / s10658-009-9550-z

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Hübel, F., and Beck, E. (1993). Определение на месте P-отношений вокруг первичного корня кукурузы по отношению к неорганическому и фитатному P. Почва растений 157, 1–9. DOI: 10.1007 / BF023

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хуссейн, М., Хамид, М. И., Тиан, Дж., Ху, Дж., Чжан, X., Чен, Дж. И др. (2018). Сообщества бактерий в почве ризосферы, корневой эндосфере и цисте почвы, подавляющей нематоды соевых бобов, заражены нематодами. FEMS Microbiol. Ecol. 94: fiy142. DOI: 10.1093 / фемсек / fiy142

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Хуссейн, М., Хамид, М. И., Ван, Н., Бин, Л., Сян, М., и Лю, X. (2016). Фактор транскрипции SKN7 регулирует конидиацию, термотолерантность, апоптотическую гибель клеток и паразитизм у нематодного эндопаразитарного гриба Hirsutella minnesotensis . Sci. Отчет 6: 30047. DOI: 10.1038 / srep30047

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Керри Б. (1988). Грибковые паразиты цистовых нематод. Agric. Экосист. Environ. 24, 293–305. DOI: 10.1016 / 0167-8809 (88)

-4

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Керри Б. Р. (1975). Грибы и уменьшение численности цист-нематод злаков в монокультуре злаков. EPPO Bull. 5, 353–361. DOI: 10.1111 / j.1365-2338.1975.tb02485.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Керри Б. Р. (1982). Убыль популяций Heterodera avenae . EPPO Bull. 12, 491–496. DOI: 10.1111 / j.1365-2338.1982.tb01834.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Керри Б. Р. (2000). Ризосферные взаимодействия и использование микробных агентов для биологической борьбы с нематодами, паразитирующими на растениях. Annu. Rev. Phytopathol. 38, 423–441.DOI: 10.1146 / annurev.phyto.38.1.423

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Керри Б. Р., Крамп Д. Х. и Маллен Л. А. (1980). Паразитические грибы, влажность почвы и размножение нематод злаковых цист. Heterodera avenae. Nematologica 26, 57–68. DOI: 10.1163 / 187529280×00567

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Клупфель, Д. А., Макиннис, Т. М., и Зер, Э. И. (1993). Участие в почвах персиковых садов корневых колонизирующих бактерий, подавляющих нематоду Criconemella xenoplax . Фитопатология 83, 1240–1245.

Google Scholar

Клупфель, Д. А., Нючепир, А. П., Лоуренс, Дж. Э., Вехтер, В. П., и Леверенц, Б. (2002). Биологический контроль над фитопаразитарной нематодой Mesocriconema xenoplax на персиковых деревьях. J. Nematol. 34, 120–123.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Kooliyottil, R., Dandurand, L.-M., and Knudsen, G.R. (2017). Поиск грибковых паразитов нематоды картофельной кисты Globodera pallida с использованием метода быстрого скрининга. J. Basic Microbiol. 57, 386–392. DOI: 10.1002 / jobm.201600683

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лейси, Л. А., и Джорджис, Р. (2012). Энтомопатогенные нематоды для борьбы с насекомыми-вредителями над и под землей с комментариями по коммерческому производству. J. Nematol. 44, 218–225.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Li, J., Zou, C., Xu, J., Ji, X., Niu, X., Yang, J., et al. (2015). Молекулярные механизмы взаимодействия нематод-нематофагов-микробов: основа биологического контроля нематод, паразитирующих на растениях. Annu. Rev. Phytopathol. 53, 67–95. DOI: 10.1146 / annurev-phyto-080614-120336

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лю К., Тимпер П., Цзи П., Мекете Т. и Джозеф С. (2017). Влияние корневых экссудатов и почвы на прикрепление Pasteuria Penetrans до Meloidogyne arenaria . J. Nematol. 49, 304–310. DOI: 10.21307 / jofnem-2017-076

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Лопес де Мендоса, М.Е., Модха, Дж., Робертс, М. К., Кертис, Р. Х. С. и Кусел, Дж. Р. (2000). Изменение липофильности поверхностей Meloidogyne incognita и Haemonchus contortus при воздействии сигналов хозяина. Паразитология 120, 203–209. DOI: 10.1017 / S00311820926

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Манкау Р. (1975). Bacillus Pentenrans n. гребень. вызывая опасное заболевание нематод, паразитирующих на растениях. J. Invertebr. Патол. 26, 333–339. DOI: 10.1016 / 0022-2011 (75) -1

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Манохар М., Тенджо-Кастано Ф., Чен С., Чжан Ю. К., Кумари А. и Уильямсон В. М. (2020). Метаболизм феромонов нематод в растениях опосредует взаимодействие растений с нематодами. Нат. Commun. 11: 208. DOI: 10.1038 / s41467-019-14104-2

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Марбан-Мендоса, Н., Гарсия, Э.Р., Диклоу Б. М. и Цукерман Б. М. (1992). Исследования Paecilomyces marquandii из почв, подавляющих нематоды chinampa. J. Chem. Ecol. 18, 775–783. DOI: 10.1007 / bf00994614

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Мартинес-Медина, А., Фернандес, И., Лок, Г. Б., Посо, М. Дж., Питерс, К. М. Дж., И Ван Вис, С. К. М. (2017). Переход от праймирования салициловой кислоты к регулируемой жасмоновой кислотой защите с помощью Trichoderma защищает томат от нематоды корневых узлов Meloidogyne incognita . New Phytol. 213, 1363–1377. DOI: 10.1111 / Nph.14251

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Макки, Л. С., Мартинес-Абад, А., Рутес, А. К., Вилаплана, Ф., и Брумер, Х. (2019). Направленный метаболизм β-глюканов у почвенных бактероидетов вида Chitinophaga pinensis . Заявл. Environ. Microbiol. 85: e02231-18. DOI: 10.1128 / AEM.02231-18

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Менди, Б., Wang’ombe, M. W., Radakovic, Z. S., Holbein, J., Ilyas, M., Chopra, D., et al. (2017). Киназа NILR1, подобная рецептору с богатым лейцином повтора Arabidopsis, необходима для индукции врожденного иммунитета к паразитическим нематодам. PLoS Pathog. 13: e1006284. DOI: 10.1371 / journal.ppat.1006284

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Микаллеф, С. А., Чаннер, С., Шиарис, М. П., и Колон-Кармона, А. (2009). Возраст и генотип растений влияют на развитие сукцессии бактериального сообщества в ризосфере Arabidopsis . Завод Сигнал. Behav. 4, 777–780. DOI: 10.4161 / psb.4.8.9229

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Mönchgesang, S., Strehmel, N., Schmidt, S., Westphal, L., Taruttis, F., Müller, E., et al. (2016). Естественная вариация корневых экссудатов у Arabidopsis thaliana – связывание метаболомических и геномных данных. Sci. Отчет 6: 29033. DOI: 10.1038 / srep29033

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Мвахеб, М.A., Hussain, M., Tian, ​​J., Zhang, X., Hamid, M. I., El-Kassim, N.A., et al. (2017). Синергетическое подавление нематод цист сои хитозаном и Hirsutella minnesotensis через сборку микробных сообществ ризосферы сои. Biol. Контроль 115, 85–94. DOI: 10.1016 / j.biocontrol.2017.09.011

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Нур, С. М., Лоуренс, Дж. Р., Чжу, Х., Сверхон, Г. Д., Уэлш, М., Велаки, Т. В. и др. (2003). Бактерии, ассоциированные с цистами нематоды соевых бобов ( Heterodera glycines ). Заявл. Environ. Microbiol. 69, 607–615. DOI: 10.1128 / AEM.69.1.607-615.2003

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ньяку, С. Т., Аффокпон, А., Данку, А., и Бренту, Ф. К. (2017). «Использование полезных ризосферных микроорганизмов для борьбы с нематодами», в Nematology – Concepts, Diagnosis and Control , ред. М. М. Шах и М. Махамуд, (Лондон: InTech), 153–182.

Google Scholar

Олатинво, Р., Беккер, Дж. О.и Борнеман Дж. (2006a). Подавление популяций Heterodera schachtii Dactylella oviparasitica в четырех почвах. J. Nematol. 38, 345–348.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Олатинво, Р., Инь, Б., Беккер, Дж. О., и Борнеман, Дж. (2006b). Подавление паразитической нематоды Heterodera schachtii грибком Dactylella oviparasitica . Фитопатология 96, 111–114. DOI: 10.1094 / Phyto-96-0111

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Орион, Д., Крицман, Г., Мейер, С. Л., Эрбе, Э. Ф., и Читвуд, Д. Дж. (2001). Роль студенистого матрикса в устойчивости яиц узловатой нематоды ( Meloidogyne spp.) К микроорганизмам. J. Nematol. 33, 203–207.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Педросо, Л. А., Кампос, В. П., Педросо, М. П., Баррос, А. Ф., Фрейре, Э. С., и Резенде, Ф. М. (2019). Летучие органические соединения, образующиеся при попадании в почву жмыха клещевины, проявляют токсическую активность против Meloidogyne incognita . Pest Manag. Sci. 75, 476–483. DOI: 10.1002 / пс 5142

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Престон, Дж. Ф., Диксон, Д. У., Маруняк, Дж. Э., Нонг, Г., Брито, Дж. А., Шмидт, Л. М. и др. (2003). Pasteuria spp .: систематика и филогения этих бактериальных паразитов фитопатогенных нематод. J. Nematol. 35, 198–207.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Праудфут, Л., Кусель, Дж. Р., Смит, Х.В., Харнетт, В., Вормс, М. Дж., И Кеннеди, М. В. (1993). Быстрые изменения поверхности паразитических нематод при переходе от пре- к постпаразитарным формам. Паразитология 107, 107–117. DOI: 10.1017 / s0031182000079464

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Пироволакис А., Вестфаль А., Сикора Р. А. и Беккер Дж. О. (2002). Выявление почв, подавляющих корневые нематоды. Заявл. Soil Ecol. 19, 51–56. DOI: 10.1016 / S0929-1393 (01) 00170-6

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Рэй, Р., Riebesell, M., Dinkelacker, I., Wang, Q., Herrmann, M., Weller Andreas, M., et al. (2008). Выделение естественно ассоциированных бактерий с нематодами necromenic Pristionchus и фитнес-последствия. J. Exp. Биол. 211, 1927–1936. DOI: 10.1242 / jeb.014944

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Рейнольдс А. М., Датта Т. К., Кертис Р. Х. К., Пауэрс С. Дж., Гаур Х. С. и Керри Б. Р. (2011). Хемотаксис может доставить нематод, паразитирующих на растениях, к источнику химиоаттрактанта кратчайшими путями. J. R. Soc. Интерфейс 8, 568–577. DOI: 10.1098 / RSIF.2010.0417

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Райли И. Т. и Рирдон Т. Б. (1995). Выделение и характеристика Clavibacter tritici , ассоциированного с Anguina tritici в пшенице из Западной Австралии. Plant Pathol. 44, 805–810. DOI: 10.1111 / j.1365-3059.1995.tb02739.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ресснер, Дж.(1987). Pilze als antagonisten von Globodera rostochiensis . Nematologica 33, 106–118. DOI: 10.1163 / 187529287×00254

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сангхобол В., Скерман В. Б. Д. (1981). Chitinophaga , новый род хитинолитических миксобактерий. Внутр. J. Syst. Бактериол. 31, 285–293. DOI: 10.1099 / 00207713-31-3-285

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шах, С. Дж., Анджам, М. С., Менди, Б., Анвер, М.А., Хабаш, С.С., Лозано-Торрес, Дж. Л. и др. (2017). Ответные реакции хозяина, связанные с повреждением, способствуют защите от нематод кисты, но не нематод с корневыми узелками. J. Exp. Бот. 68, 5949–5960. DOI: 10.1093 / jxb / erx374

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сиддики, З.А., и Махмуд, И. (1999). Роль бактерий в борьбе с нематодами, паразитирующими на растениях: обзор. Биоресурсы. Technol. 69, 167–179. DOI: 10.1016 / S0960-8524 (98) 00122-9

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Саймонс П. К., Грюндлер Ф. М. У., фон Менде Н., Берроуз П. Р. и Висс Ю. (1991). Arabidopsis thaliana как новый модельный хозяин для нематод, паразитирующих на растениях. Plant J. 1, 245–254. DOI: 10.1111 / j.1365-313X.1991.00245.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сикора Р. А., Шефер К. и Дабабат А. А. (2007). Способы действия, связанные с индуцированным микробами in planta подавлением паразитарных растений нематод. Australas. Завод Патол. 36, 124–134. DOI: 10.1071 / AP07008

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Силва, Дж. К. П., Кампос, В. П., Баррос, А. Ф., Педросо, М. П., Терра, В. К., Лопес, Л. Е. и др. (2018). Летучие вещества растений снижают жизнеспособность узловатой нематоды Meloidogyne incognita либо непосредственно, либо при сохранении в воде. Завод Dis. 102, 2170–2179. DOI: 10.1094 / PDIS-01-18-0143-RE

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сингх, Дж., Кумар, М. У., Валиа, Р. К. (2014). Влияние экссудатов корней растений на прилипание эндоспор Pasteuria Penetrans . Нематология 16, 121–124. DOI: 10.1163 / 15685411-00002768

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сонг, Дж., Ли, С., Вэй, В., Сюй, Ю. и Яо, К. (2017). Оценка паразитических грибов для уменьшения нематод цист сои с подавляющей почвой на соевых полях северо-востока Китая. Acta Agric. Сканд. B Почвенное растение Sci. 67, 730–736.DOI: 10.1080 / 010.2017.1343377

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шпигель Ю., Инбар Дж., Кахане И. и Шарон Э. (1995). Домены распознавания углеводов на поверхности нематод-фитофагов. Exp. Паразитол. 80, 220–227. DOI: 10.1006 / expr.1995.1027

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Шпигель Ю. и МакКлюр М. А. (1995). Поверхностный покров нематод, паразитирующих на растениях: химический состав, происхождение и биологическая роль – обзор. J. Nematol. 27, 127–134.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Стирлинг Г. Р. и Керри Б. Р. (1983). Антагонисты нематоды цисты злаков Heterodera avenae Woll. в австралийских почвах. Aust. J. Exp. Agr. 23, 318–324.

Google Scholar

Стирлинг Г. Р. и Вахтель М. Ф. (1980). Массовое производство Bacillus Penetrans для биологической борьбы с узловатыми нематодами. Nematologica 26, 308–312.DOI: 10.1163 / 187529280X00260

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Стирлинг Г. Р. и Уайт А. М. (1982). Распространение паразита узловатой нематоды на виноградниках Южной Австралии. Завод Dis. 66, 52–53.

Google Scholar

Стирлинг, Г. Р., Вонг, Э., и Бхуйян, С. (2017). Pasteuria , бактериальный паразит нематод, паразитирующих на растениях: его встречаемость в почвах сахарного тростника Австралии и его роль в качестве агента биологической борьбы в естественно зараженных почвах. Australas. Завод Патол. 46, 563–569. DOI: 10.1007 / s13313-017-0522-z

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Сунь, М. Х., и Лю, Х. З. (2000). Подавляющие почвы нематоды соевых бобов в Китае. Acta Phytopathol. Грех. 30, 353–356.

Google Scholar

Сабо, М., Чепреги, К., Гальбер, М., Вирани, Ф., и Фекете, К. (2012). Контроль паразитирующих на растениях нематод с помощью видов Trichoderma и грибов-ловушек для нематод: роль генов chi18-5 и chi18-12 в паразитизме яиц нематод. Biol. Контроль 63, 121–128. DOI: 10.1016 / j.biocontrol.2012.06.013

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Тейлор К. Э. и Браун Д. Дж. Ф. (1997). Нематодные векторы вирусов растений. Уоллингфорд, Коннектикут: CAB International.

Google Scholar

Тянь Б., Ян Дж. И Чжан К.-К. (2007). Бактерии, используемые для биологической борьбы с нематодами, паразитирующими на растениях: популяции, механизмы действия и перспективы на будущее. FEMS Microbiol.Ecol. 61, 197–213. DOI: 10.1111 / j.1574-6941.2007.00349.x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Топалович, О., Бреденбрух, С., Шлекер, А.С.С., и Хойер, Х. (2020a). Микробы, прикрепляющиеся к эндопаразитическим фитонематодам в почве, запускают защиту растений при проникновении нематод в корни. Фронт. Plant Sci. 11: 138. DOI: 10.3389 / fpls.2020.00138

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Топалович О., Эльхади А., Халльманн, Х., Рихерт-Пёггелер, К., Хойер, Х. (2019). Бактерии, выделенные из кутикулы нематод, паразитирующих на растениях, прикрепились к нематоде-корневому узлу и противодействовали ей. Meloidogyne hapla . Sci. Отчет 9: 1477. DOI: 10.1038 / s41598-019-47942-7

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Топалович, О., Хойер, Х., Рейнеке, А., Цинкернагель, Дж., И Хальманн, Дж. (2020b). Антагонистическая роль микробиома из Meloidogyne hapla – подавляющей почвы против видов фитонематод с различными жизненными стратегиями. Нематология 22, 75–86. DOI: 10.1163 / 15685411-00003285

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Вашон В., Лапрад Р. и Шварц Ж.-Л. (2012). Современные модели механизма действия инсектицидных кристаллических белков Bacillus thuringiensis : критический обзор. J. Invertebr. Патол. 111, 1–12. DOI: 10.1016 / j.jip.2012.05.001

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

ван дер Путтен, В. Х., Брэдфорд, М.А., Пернилла Бринкман, Э., ван де Вурде, Т. Ф. Дж., И Вин, Г. Ф. (2016). Где, когда и как важна обратная связь между растениями и почвой в меняющемся мире. Funct. Ecol. 30, 1109–1121. DOI: 10.1111 / 1365-2435.12657

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Ван, Н., Чжан, Ю., Хуссейн, М., Ли, К., Сян, М., и Лю, X. (2016a). Митохондриальный геном нематодного эндопаразитарного гриба Hirsutella rhossiliensis . Митохондриальная ДНК B 1, 114–115.DOI: 10.1080 / 23802359.2016.1143336

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Wang, N., Zhang, Y., Jiang, X., Shu, C., Hamid, M. I., Hussain, M., et al. (2016b). Популяционная генетика Hirsutella rhossiliensis , доминантного паразита молоди цистовой нематоды в континентальном масштабе. Заявл. Environ. Microbiol. 82, 6317–6325. DOI: 10.1128 / AEM.01708-16

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Wei, J.-Z., Hale, K., Carta, L., Platzer, E., Wong, C., Fang, S.-C., et al. (2003). Bacillus thuringiensis кристаллических белков, нацеленных на нематод. Proc. Natl. Акад. Sci. США 100, 2760–2765. DOI: 10.1073 / pnas.0538072100

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Weibelzahl-Fulton, E., Dickson, D. W., and Whitty, E. B. (1996). Подавление Meloidogyne incognita и M. javanica с помощью Pasteuria Penetrans в полевой почве. J. Nematol. 28, 43–49.

PubMed Аннотация | Google Scholar

Веллер Д. М., Раайджмейкерс Дж. М., Гарденер Б. Б. и Томашоу Л. С. (2002). Популяции микробов, ответственные за специфическую подавляющую способность почвы по отношению к патогенам растений. Annu. Rev. Phytopathol. 40, 309–348. DOI: 10.1146 / annurev.phyto.40.030402.110010

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Westcott, S. W., and Kluepfel, D. A. (1993). Ингибирование вылупления яиц Criconemella xenoplax с помощью Pseudomonas aureofaciens . Фитопатология 83, 1245–1249.

Google Scholar

Вестфаль А. и Беккер Дж. О. (1999). Биологическое подавление и естественная убыль популяции Heterodera schachtii в поле Калифорнии. Фитопатология 89, 434–440. DOI: 10.1094 / PHYTO.1999.89.5.434

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Вестфаль А., Беккер Дж. О. (2001). Компоненты почводавления против Heterodera schachtii . Soil Biol. Biochem. 33, 9–16. DOI: 10.1016 / S0038-0717 (00) 00108-5

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Уильямс, Т. Д. (1969). Воздействие формалина, набама, орошения и азота на Heterodera avenae Woll., Ophiobolus graminis Sacc. и рост яровой пшеницы. Ann. Прил. Биол. 64, 325–334. DOI: 10.1111 / j.1744-7348.1969.tb02882.x

CrossRef Полный текст | Google Scholar

Вильшут, Р.A., van der Putten, W.H., Garbeva, P., Harkes, P., Konings, W., Kulkarni, P., et al. (2019). Признаки корней и подземных травоядных связаны с изменчивостью обратной связи между сородичами растений и почвой. Нат. Commun. 10: 1564. DOI: 10.1038 / s41467-019-09615-x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Xu, Y.-Y., Lu, H., Wang, X., Zhang, K.-Q., and Li, G.-H. (2015). Влияние летучих органических соединений бактерий на нематод. Chem. Биодайверы. 12, 1415–1421.DOI: 10.1002 / cbdv.201400342

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Янг, Л.-Л., Хуанг, Ю., Лю, Дж., Ма, Л., Мо, М.-Х., и Ли, В.-Дж. (2012). Lysinibacillus mangiferahumi sp. nov., новая бактерия, продуцирующая нематицидные летучие вещества. Антони ван Левенгук 102, 53–59. DOI: 10.1007 / s10482-012-9712-4

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Янг, Ю., Ян, Э., Ан, З., и Лю, X. (2007).Эволюция улавливающих нематод клеток хищных грибов Orbiliaceae на основе данных ДНК, кодирующих рРНК, и мультипротеиновых последовательностей. Proc. Natl. Акад. Sci. США 104, 8379–8384. DOI: 10.1073 / pnas.0702770104

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Инь, Б., Валинский, Л., Гао, X., Беккер, Дж. О., и Борнеман, Дж. (2003a). Идентификация рДНК грибов, ассоциированная с почвенной супрессивностью в отношении Heterodera schachtii , с использованием олигонуклеотидного фингерпринтинга генов рибосомной РНК. Фитопатология 93, 1006–1013. DOI: 10.1094 / PHYTO.2003.93.8.1006

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Инь, Б., Валински, Л., Гао, Х. Б., Беккер, Дж. О., и Борнеман, Дж. (2003b). Бактериальные гены рРНК, связанные с почвенной супрессией в отношении нематоды, паразитирующей на растениях, Heterodera schachtii . Заявл. Environ. Microbiol. 69, 1573–1580. DOI: 10.1128 / AEM.69.3.1573-1580.2003

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Yu, Q.и Куземанс Дж. (1998). Грибы, ассоциированные с цистами Globodera rostochiensis , G. pallida и Heterodera schachtii , а также яйцеклетками и самками Meloidogyne hapla в Бельгии. Фитопротекция 79, 63–69. DOI: 10.7202 / 706135ar

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Чжан, В., Ху, К., Хуссейн, М., Чен, Дж., Сян, М., и Лю, X. (2019). Роль члена кальциевой системы с низким сродством Рис. 1 Гомологичные белки в конидиации и образовании ловушек у ловящего нематоды гриба Arthrobotrys oligospora . Sci. Отчет 9: 4440. DOI: 10.1038 / s41598-019-40493-x

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Zhou, D., Feng, H., Schuelke, T., De Santiago, A., Zhang, Q., Zhang, J., et al. (2019). Микробиомы ризосферы из растений, не зараженных нематодами корневых узлов, подавляют инфекцию нематод. Microb. Ecol. 78, 470–481. DOI: 10.1007 / s00248-019-01319-5

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Цукерман, Б.М. (1983). Гипотезы и возможности вмешательства при химиотерапии нематод. J. Nematol. 15, 173–182.

Google Scholar

Цукерман, Б. М., Диклоу, М. Б., Коулз, Г. К., Гарсия-Э, Р. и Марбан-Мендоса, Н. (1989). Подавление паразитических нематод растений в сельскохозяйственных почвах чинампа. J. Chem. Ecol. 15, 1947–1955. DOI: 10.1007 / BF01012278

PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

Роль корневой микробиоты в продуктивности растений на JSTOR

Abstract

Растущее население требует все большего количества продуктов питания, но современное сельское хозяйство имеет ограниченные возможности для увеличения урожайности.Можно вывести новые сорта сельскохозяйственных культур для повышения урожайности и большей устойчивости к стрессам окружающей среды и вредителям. Тем не менее, они по-прежнему нуждаются в удобрениях для пополнения необходимых питательных веществ, которые обычно ограничены в почве. Почвенные микроорганизмы дают возможность снизить потребность в неорганических удобрениях в сельском хозяйстве. Микроорганизмы, благодаря своему огромному генетическому фонду, также являются потенциальным источником биохимических реакций, которые перерабатывают необходимые питательные вещества для роста растений. Микробы, которые ассоциируются с растениями, можно рассматривать как часть пангенома растения.Поэтому для нас важно понимать структуру микробного сообщества и его «метагеном», а также то, как на него влияют различные типы почвы и сорта сельскохозяйственных культур. В будущем мы сможем изменить и лучше использовать потенциал почвенной микробиоты для стимулирования роста растений.

Journal Information

Цель JXB – публиковать рукописи высочайшего качества, в которых рассматриваются вопросы, представляющие широкий интерес в биологии растений. Мы приветствуем рукописи, которые определяют фундаментальные механизмы, в том числе лежащие в основе улучшения растений для устойчивого производства продуктов питания, топлива и возобновляемых материалов.Мы делаем упор на молекулярную физиологию, молекулярную генетику и физиологию окружающей среды, и мы поощряем интегративные подходы с использованием передовых технологий, системной биологии и синтетической биологии.

Информация об издателе

Oxford University Press – это отделение Оксфордского университета. Издание во всем мире способствует достижению цели университета в области исследований, стипендий и образования. OUP – крупнейшая в мире университетская пресса с самым широким глобальным присутствием.В настоящее время он издает более 6000 новых публикаций в год, имеет офисы примерно в пятидесяти странах и насчитывает более 5500 сотрудников по всему миру. Он стал известен миллионам людей благодаря разнообразной издательской программе, которая включает научные работы по всем академическим дисциплинам, библии, музыку, школьные и университетские учебники, книги по бизнесу, словари и справочники, а также академические журналы.

Microbiota decussata – BBC Gardeners ‘World Magazine

Microbiota decussata – необычное раскидистое хвойное дерево, образующее низкорослый мат из мягкой перистой ярко-зеленой листвы.Зимой эта листва становится темно-бронзовой. Кипарисовик сибирский ковер, идеально подходящий для выращивания в качестве почвопокровного растения, смягчает края дорожек и каскады над рокариями и стенами. Королевское садоводческое общество наградило его престижной наградой за заслуги в области сада.

Для достижения наилучших результатов выращивайте Microbiota decussata в передней части границы на полном солнце.

Как выращивать

Microbiota decussata

• Размер установки

  20см высота

  1.5м распространение

• На солнце: Полное солнце
• Тип почвы: Хорошо дренированный / легкий / песчаный / глина / тяжелый / влажный / меловой / щелочной

Календарь растений

Таблица, показывающая, в какие месяцы лучше всего сеять, сажать и собирать урожай.

	Янв	фев	марта	Апрель	мая	июн	июл	августа	сен	окт	ноя	декабрь
Завод	J Не сажать в январе	F Не сажать в феврале								О Не сажать в октябре	N Не сажать в ноябре	D Не сажать в декабре
Чернослив	J Не обрезайте в январе	F Не обрезайте в феврале									N Не обрезайте в ноябре	D Не обрезать в декабре

Микробиота decussata и дикая природа

Microbiota decussata не представляет особой ценности для дикой природы Великобритании.

Ядовита ли

Microbiota decussata ?

Microbiota decussata токсических эффектов не обнаружено.

Не сообщалось о токсичности для:

Нет сообщений о токсичности для Птицы

Нет сообщений о токсичности для Кошки

Нет сообщений о токсичности для Собаки

Нет сообщений о токсичности для Лошади

Нет сообщений о токсичности для Домашний скот

Нет сообщений о токсичности для Люди

.